Tecniche microbiologiche

Presentazione sul tema: "Tecniche microbiologiche"— Transcript della presentazione:

1 Tecniche microbiologiche

2 MICROSCOPIO OTTICO

3 Microscopio ottico

4 Ingrandimento Ingrandimento oculare X Ingrandimento obbiettivo =
Ingrandimento totale

5 Ingrandimento L’ingrandimento dell’oggetto da osservare è determinato dal prodotto del potere di ingrandimento dell’oculare (6-10x) per il potere di ingrandimento dell’obbiettivo (10-100x) Gli obbiettivi anche in base all’ingrandimento sono definiti a secco o ad immersione L’ingrandimento dell’oggetto dovuto alle lenti dell’obbiettivo è un’immagine reale, ingrandita e rovesciata, viene ingrandita dall’oculare determinando una immagine virtuale diritta ed ingrandita

6 L’immagine oltre che ingrandita
Deve essere: Sufficientemente e convenientemente illuminata Priva di aberrazioni cromatiche e di sfericità Nitida permettendo la discriminazione di due punti dell’immagine vicinissimi (potere di risoluzione dell’obbiettivo)

7 Il potere di risoluzione (R) di un obbiettivo
La capacità di distinguere chiaramente due punti vicinissimi tra loro è rappresentato da un numero che indica il diametro dell’oggetto più piccolo perfettamente distinguibile Più piccolo è il numero migliore risulta il potere risolvente Il potere di risoluzione è dato dalla seguente formula R=0.61 λ/NA Λ lunghezza d’onda della luce NA è l’apertura numerica (n x sen α) n è l’indice di rifrazione del mezzo interposto tra obbiettivo e l’oggetto α è la metà dell’angolo di apertura dell’obbiettivo

8 Osservazione a secco

9 OBIETTIVO AD IMMERSIONE

10 Indice di rifrazione Negli obbiettivi a secco il mezzo interposto è l’aria l’indice di rifrazione è = 1, tali obbiettivi danno ingrandimenti non elevati con scarso potere di risoluzione e apertura numerica inferiore ad 1 Negli obbiettivi ad immersione il mezzo interposto è l’olio di cedro con indice di rifrazione tra 1,51-1,53, danno ingrandimenti elevati (100x) con apertura numerica superiore ad 1

11 Microscopio a contrasto di fase
Permette di differenziare meglio le strutture interne dei microrganismi a fresco in base alla differente rifrazione delle strutture rispetto al protoplasma circostante È composto da un diaframma anulare che è formato da un anello cavo centrale attraverso il quale passano i raggi luminosi situato al di sotto del condensatore e da una lamina di fase costituita da materiale trasparente e provvista di un solco circolare meno spesso corrispondente all’anello cavo del diaframma situata dietro la lente frontale dell’obbiettivo con funzione ritardatrice

12 MICROSCOPIO A CONTRASTO DI FASE
ANELLO DI FASE PIANO DELL’IMMAGINE OCULARE OBIETTIVO CAMPIONE CONDENSATORE LUCE

13 Osservazione diretta di preparati non colorati
Preparazione in soluzione fisiologica: Materiali: NaCl 0,85%, vetrini portaoggetto, paraffina Tecnica: stemperare una quantità di campione in una goccia di soluzione fisiologica. Osservazione Scopo: osservazione preliminare

14 Preparazione del vetrino per la colorazione
Distensione Preparazione del materiale Essiccamento Fissazione

15 Fissazione Al calore: si preserva la morfologia ma non le strutture intracellulari Fissazione chimica: protegge le strutture intracellulari e la morfologia di microrganismi più grossi e delicati Meccanismo: il fissante chimico penetra nella cellula e reagisce con i componenti cellulari (diventano insolubili ed immobili) Composizione: etanolo- acido acetico-formaldeide

16 Colorazione semplice Colorazione con blu di metilene
Scopo: per l’osservazione dei batteri (forma, dimensione)

17 Colorazione di Gram

18 Colorazione di GRAM Colorazione differenziale
Cristal violetto e lugol si combinano a formare grosse molecole che precipitano sulla cellula Alcool ed acetone dissolvono la membrana esterna il sottile strato di peptidoglicano è incapace di trattenere il colore

19 Colorazione di Gram

20 Conta delle colonie

21 Assorbanza

22 Metodo per diluizione

23 Metodo per diluizione

24 Metodo per diluizione

25 Metodo per diluizione

26 Numero di cellule 107 105 106

27 Conta microbica utilizzando penna conta colonie
Conta microbica utilizzando lente d’ingrandimento

28 CONTACOLONIE ELETTRONICO

29 SEMINA SU PIASTRA PER ISOLAMENTO COLONIE

30 PRELIEVO DA PIASTRA

31 Prelievo colonia

32 Tecnica per l’isolamento

33 Tecnica di isolamento

34 COLONIE MISTE

35 Colture pure e caratteri colturali: popolazioni microbiche naturali
I microrganismi, quando crescono su un terreno di laboratorio, sono chiamati coltura. Colture miste Colture pure Differenti specie microbiche Popolazione di cellule abitano varie parti del corpo derivate tutte da (orale, intestinale, cutanea) un’unica cellula madre. e dell’ambiente (aria, suolo, acqua).

36 Coltivazione dei batteri
Per studiare i microrganismi devono poter essere coltivati in laboratorio. Per questo scopo si devono conoscere quali sostanze nutritizie e quali condizioni fisiche essi richiedono. Queste informazioni hanno consentito di sviluppare numerosi terreni di coltura.

37 Terreni di coltura Selettivi inibiscono la crescita di un gruppo di microrganismi mentre permettono la crescita di altri Differenziali contengono sostanze che permettono di evidenziare una determinata reazione chimica con cambiamento di colore Arricchiti contengono sostanze (sangue, siero, emoglobina ) che permettono la crescita di alcuni microrganismi

38 Preparazione dei terreni colturali
Dissoluzione degli ingredienti in volume di H2O. Determinazione del pH ed eventuale correzione. Distribuzione in contenitori idonei. Sterilizzazione.

39 TERRENO A BECCO DI CLARINO

40 TERRENO LIQUIDO

41 Terreni batteriologici
semisolido (+Agar 0,5%) Solido (+Agar 2%)

42 Terreni solidificabili
Possibilità di aggiungere sostanze termolabili Mezzi per il conteggio dei batteri. Mezzi per la caratterizzazione batterica Terreni di mantenimento.

43 Agar Sostanza polisaccaridica (estere solforico di una molecola
lineare di galattano) di alghe rosse marine della famiglia delle Geliciaee. La solidificazione varia a seconda del tipo alga da cui deriva. Non presenta alcuna caratteristica nutritiva per i microbi. Componenti fisiche: punto di fusione 85°C; stato di soprafusione fino a 42°C; stato solido <42°C.

44 Terreni solidi: colonia
Capacità di una singola cellula di formare una colonia Masse visibili di cellule formate dalle successive divisioni di una o piu’ cellule Numero di cellule

45 Colonie batteriche

46 Valutazione delle colonie
osservazione del terreno attorno alle colonie (attività metaboliche) dimensioni (diametro) margine o bordo. rilievo colore superficie trasparenza consistenza.

47 Valutazione delle colonie
S.aureus: convessa, bordo regolare, diametro 2-3mm, cremosa, giallastra, beta emolisi E.coli: cupoliforme, opaca, grigia,

48 EMB agar Crescita di Batteri Gram-. Gram+ sono inibiti dall’eosina e dal blue di metilene, E. coli produce colonie scure Enterobacter produce colonie larghe, violacee

49 AGAR SANGUE Emolisi

50 MANNITOL SALT AGAR

51 SENSIBILITA’ AGLI AGENTI ANTIMICROBICI
Chl Amp Ery Str Tet Disk Diffusion Test 8 4 2 1 Tetracycline (g/ml) MIC = 2g/ml Determination of MIC

52 Definizioni Concentrazione Minima Inibente (MIC)
E’ la concentrazione più bassa di a.a. in grado di inibire la crescita microbica Concentrazione Minima Battericida (MBC) La più bassa concentrazione di a.a. che determina la morte del 99,9% dei batteri presenti

53 Determinazione delle sensibilita’ agli agenti antimicrobici mediante prova per diluizione in terreno liquido. Calcolo della Minima Concentrazione Inibente (MIC) e della Minima Concentrazione Battericida (MBC)

54 Determinazione delle sensibilita’ agli agenti antimicrobici mediante prova per diluizione in terreno liquido. Calcolo della Minima Concentrazione Inibente (MIC) e della Minima Concentrazione Battericida (MBC)

55 ANTIBIOGRAMMA

56 METODO PER DIFFUSIONE (ANTIBIOGRAMMA)

57 ANTIBIOGRAMMA

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60 RILEVAZIONE BASATA SU PARTICOLARI PROPRIETA’ DEL VIRUS mediante
EMOAGGLUTINAZIONE Si basa sulla capacità della proteina emoagglutinina di legarsi ai recettori presenti sugli eritrociti di alcune specie animali (emazie di pollo) o su eritrociti umani 0 Rh+. La reazione di emoagglutinazione causa una aggregazione (formazione di un reticolo) delle emazie visibile ad occhio nudo. Usato per la titolazione del virus influenzale e del virus parainfluenzale

61 Emoagglutinazione Diluizioni seriali 1/2 del campione in multiwell da 96 pozzetti. Aggiunta di uguale volume di eritrociti diluiti in tampone allo 0.5%. Incubazione a Temperatura ambiente per circa 1 ora. Formazione del reticolo dove è presente il virus. Formazione di un precipitato bottone rosso in assenza di virus. Titolo emoagglutinante è rappresentato dall’ultima diluizione che da’ Emoagglutinazione completa

62 RILEVAZIONE BASATA SU PARTICOLARI PROPRIETA’ DEL VIRUS mediante
EMOADSORBIMENTO Principio identico all’emoagglutinazione ma tecnica eseguita su colture cellulari. Le cellule infettate esprimono sulla membrana plasmatica l’emoagglutinina virale. Vengono aggiunti eritrociti alla coltura cellulare e si attende la formazione di rosette costituite da una singola cellula infetta circondata da eritrociti.

63 RILEVAZIONE DELL’INFETTIVITA’ mediante
SAGGI BIOLOGICI Il campione viene posto su colture cellulari uova embrionate di pollo animali da esperimento La moltiplicazione virale può essere valutata tramite: Visualizzazione effetto citopatico indotto dal virus Metodiche descritte in precedenza

64 Colture cellulari Colture primarie cellule ottenute da espianto di tessuto prelevato da un organismo vivente. Durata 1-2 replicazioni cellulari. Colture continue cellule ottenute da colture primarie trasformate. Possono essere propagate indefinitamente.

65 Cappa sterile a flusso laminare verticale
Incubatore a CO2 Cappa sterile a flusso laminare verticale Terreno di coltura Ricco di sali, aminoacidi, vitamine Siero fetale bovino Ricco di fattori di crescita Fiasca sterile

66 RILEVAZIONE DELL’INFETTIVITA’ mediante
VISUALIZZAZIONE EFFETTO CITOPATICO INDOTTO DAL VIRUS Valutazione del monostrato cellulare infettato al microscopio ottico a contrasto di fase Cellule MDCK Cellule VERO Controllo Controllo Infettate con virus influenzale Infettate con virus erpetico

67 RILEVAZIONE DELL’INFETTIVITA’ mediante
METODO DELLE PLACCHE Diluizioni seriali 1/10 del campione su monostrati confluenti di cellule sensibili all’infezione. Dopo l’infezione aggiunta di uno strato di agar molle e piastre lasciate in incubatore da 24 a 72 ore per permettere la formazione delle placche (zone circoscritte di effetto citopatico). Colorazione con coloranti vitali (es. cristalvioletto). PLACCA teoricamente la progenie virale contenuta in una placca è la progenie di un singolo clone. Usato per la titolazione di diversi virus fra cui virus influenzale, virus erpetico, rhinovirus, coronavirus TITOLAZIONE n° di placche/ml = p.f.u./ml