PRODUZIONE DI FARMACI RICOMBINANTI

Presentazione sul tema: "PRODUZIONE DI FARMACI RICOMBINANTI"— Transcript della presentazione:

1 PRODUZIONE DI FARMACI RICOMBINANTI
Produzione proteine umane in grandi quantità sostituisce la purificazione da: - organi o tessuti animali di proteine animali a volte poco efficaci o con effetti allergici o contaminanti; - organi e tessuti umani (sangue o organi di cadaveri); es. purificazione ormoni della crescita da ipofisi e rischio di malattia Creutzfeld-Jacob Produzione in batteri Produzioni in eucarioti microbici Produzioni in cellule animali vantaggi: modificazioni post-traduzionali delle proteine autentiche svantaggi: colture costose (supporto solido per la crescita, densità minime, uso di vettori virali e possibili conseguenze nella co-purificazione) Produzioni in animali e piante transgenici = pharming (pharmacological e farming)

2 PRODUZIONE DI FARMACI RICOMBINANTI IN CELLULE PROCARIOTICHE, EUCARIOTICHE O PHARMING
PRODOTTO MALATTIA Insulina Diabete Somatostatina Disordini della crescita, acromegalia, nanismo Somatotrofina Fattore VIII Emofilia A Interferone (vari) Leucemia e altri tumori Fattore di crescita epidermide Ulcere Fattore di crescita fibroblasti Eritropoietina Anemia Attivatore tissutale plasminogeno Infarto

3 PRODUZIONE DI ORMONI (FARMACI) RICOMBINANTI IN CELLULE PROCARIOTICHE: INSULINA
Molecola piccola non glicosilata, ponti disolfuro Proteina di fusione:vettore pBR322; pochi aa della -galattosidasi di E. coli seguiti dalla metionina Formazione del legame disolfuro inefficiente! Cambiata la sintesi (vedi diapo successiva)

4 PRODUZIONE DI ORMONI (FARMACI) RICOMBINANTI IN CELLULE PROCARIOTICHE: INSULINA
Dopo ripiegamento spontaneo tagli proteolitici eliminano il peptide leader “L” e il segmento C

5 PRODUZIONE DI ORMONI (FARMACI) RICOMBINANTI IN CELLULE PROCARIOTICHE: SOMATOSTATINA
Molto piccola: solo 14 aa = 42 bp aa della -galattosidasi di E. coli seguiti dalla metionina

6 PRODUZIONE DI ORMONI (FARMACI) RICOMBINANTI IN CELLULE PROCARIOTICHE: SOMATOTROFINA
Proteina grande: 191 aa Estrazione di mRNA ipofisario, produzione cDNA, Sito di taglio per HaeIII inserimento leader sintetico, clonaggio, trasformazione batteri, produzione proteina Leader sintetico: codoni 1-24 sostituiti (stessi aa) per corretta traduzione (propensione del codice) in E. coli

7 PRODUZIONE DI PROTEINE IN CELLULE ANIMALI
Cellule di insetto in coltura (sistema di espressione: baculovirus) Insetti vivi (sistema di espressione: virus patogeni specifici) Cellule di mammifero in coltura Animali vivi come bioreattori (pharming)

8 METODI DI TRASFERIMENTO GENICO IN CELLULE DI MAMMIFERO
1) Trasferimento genico diretto: trasfezione mediata da liposomi trasfezione mediata da recettori trasfezione DNA libero con microiniezione nel nucleo 2) Trasferimento tramite vettori - plasmidici virali (trasduzione) 3) Tipi di Inserzione: ectopica mirata 4) Obiettivi: Produzione di proteine e farmaci Inserzione di geni in cellule specifiche per creazione di animali transgenici Terapia genica somatica nell’uomo

9 METODI DI TRASFERIMENTO GENICO IN CELLULE DI MAMMIFERO
Inserzione ectopica: effetto di posizione Influenza di elementi di regolazione endogeni (enhancer, silenziatori) Influenza struttura cromatina (eterocromatina, DNA ipermetilato) Inserzione mirata Inserimento nel genoma in una posizione occupata da sequenza omologa Controllo di espressione del transgene Uso di promotori costitutivi (es: promotore + enhancer di SV40) per geni sempre attivi e molto espressi Uso di promotori inducibili specifici per tipo cellulare o stadio di sviluppo Uso di proteine di fusione che facilitano rilevazione e purificazione

10 INGEGNERIA GENETICA NEGLI ANIMALI
Transgenesi: tecnologia del trasferimento genico per introdurre sequenze di DNA nel genoma di cellule animali (o vegetali) - Creazione di linee cellulari transgeniche Creazione di animali transgenici (contengono il gene clonato in tutte le loro cellule) Scopi: Produzione di proteine ricombinanti a scopo farmacologico (anche da animali vivi: pharming) Creazione di modelli animali per malattie umane - Ingegnerizzazione di cellule umane per la terapia genica in vivo o ex vivo

11 Trasferimento genico diretto
Trasfezione (per endocitosi) mediata da liposomi anionici o cationici Analogo sintetico del doppio strato fosfolipidico di membrana DNA trasportato nell’interno DNA trasportato all’esterno 11

12 Trasferimento genico diretto

13 Trasferimento genico diretto
Trasfezione (per endocitosi) mediata da recettori Esempio:utilizzo recettore TfR

14 Trasferimento genico diretto
Trasfezione DNA libero con microiniezione Inserzione di più copie di DNA lineare

15 Trasferimento genico tramite vettori virali
Virus a DNA o ad RNA Obiettivo Introdurre e pilotare l’espressione di transgeni in cellule in coltura Espressione Transitoria per transgeni non integrati nel genoma ospite, elevata espressione ma necessario trattamento ripetuto Stabile ma ridotta per transgeni integrati Svantaggi Possibile mutagenesi inserzionale (per quelli che si integrano in maniera casuale nel genoma) Inserzione di geni (o molecole di DNA) di dimensioni limitate Tecniche con bassa efficienza e costi elevati

16 Trasferimento genico tramite vettori virali
Sistema vettoriale Ospite e localizzazione Considerazioni SV40 Vari mammiferi può o meno integrarsi Adenovirus (virus raffreddore) Vari mammiferi, di solito episomico Inserto fino a 8 kb, elevato livello espressione Virus adeno-associati Vari mammiferi, si integra siti specifici cromosoma 19 Inserto fino a 4,5 kb, necessita di adenovirus per packaging Papillomavirus (cancro del collo uterino) Vari mammiferi, integrazione stabile Inserzione DNA di buone dimensioni Elevato livello espressione Retrovirus Ampia gamma, si integra come cDNA Dimensioni fino a 8,5 kb

17 Trasferimento genico tramite vettori virali
Svantaggi Virus non integrati: espressione transiente Virus integrati: espressione stabile, possibile mutagenesi inserzionale (per quelli che si integrano in maniera casuale nel genoma) Inserzione di geni (o molecole di DNA) di dimensioni limitate Tecniche con bassa efficienza e costi elevati

18 Trasferimento genico tramite vettori virali in cellule di mammifero
Siti di clonaggio Primo virus utIlizzato fine anni ‘70: Virus della scimmia Genoma 5,2 kb Promotore costitutivo forte Eliminazione di alcuni geni virali per inserire DNA esogeno Adatto a molti tipi cellulari Alta efficienza espressione transiente Limitazioni inserto per permettere packaging

19 PRODUZIONE DI FARMACI RICOMBINANTI IN CELLULE DI MAMMIFERO: IL FATTORE VIII
Produzione in E. coli impossibile 26 esoni e 25 introni 2351 aa Proteina dimerica: subunità A e C con17 legami disolfuro e molti siti glicosilati Necessari 17 legami disolfuro e glicosilazione: tentativi di produzione in E. coli ma proteina non attiva!

20 PRODUZIONE DI FARMACI RICOMBINANTI IN CELLULE DI MAMMIFERO: IL FATTORE VIII
Due cDNA (subunità A e subunità C) clonati in 2 vettori di espressione plasmidici separati. Promotore Ag: ibrido sequenza promotori -actina di pollo e -globina di coniglio Plasmidi introdotti in linea cellulare di hamster Produzione efficiente e proteina attiva FVIII prodotto anche tramite pharming, promotori tissutali specifici (es:- lattoglobulina per secrezione proteina nel latte nel maiale)

21 PROTEINE PRODOTTE IN FLUIDI BIOLOGICI DI ANIMALI TRANSGENICI USATI COME BIOREATTORI
Sistema Specie Prodotto Latte Maiale Fattore VIII Topo Attivatore plasminogeno tissutale umano Ormone della crescita umana Fibrinogeno umano Coniglio Eritropoietina umana Pecora 1-antitripisina umana Fattore IX Capra Siero (sangue) Urine

22 CREAZIONE DI ANIMALI TRANSGENICI
1) Trasferimento genico tramite microiniezione nel pronucleo maschile di una cellula uovo appena fecondata. Se l’inserimento genico riesce, tutto l’animale che ne deriva è trangenico (comprese cellule germinali) 2) Trasferimento nucleare di cellula somatica con transgene in oocita fecondato privo di nucleo e reimpianto in madre surrogata. Tutto l’animale che ne deriva è trangenico 3)Trasferimento genico in cellule embrionali staminali (ES) e reimpianto in blastocisti di madre surrogata L’animale che ne deriva è chimerico (produrrà transgenici solo se le sue cellule germinali contengono il transgene) A monte del gene da esprimere sempre inserito un promotore, a volte con specificità tissutali

23 CLONAGGIO NELLE CELLULE DI MAMMIFERO
CON MICROINIEZIONE NEL PRONUCLEO MASCHILE Trasferimento genico mediante microiniezione nel pronucleo maschile - Microiniezione di plasmidi batterici con DNA gene da inserire - Microiniezione di copie di DNA lineare (privo di vettore) Inserimento nel DNA cromosomico di copie multiple in tandem Utilizzo: permettono la produzione di animali transgenici per produzione farmaci o quali modello di malattie umane Svantaggi: Inserzione ectopica Scarsa efficienza di integrazione Se integrati possono a loro volta dare mutagenesi inserzionale

24 Trasferimento genico tramite microiniezione nel pronucleo maschile
Stimolazione dell’ovulazione in una femmina Appena dopo l’accoppiamento prelevato ovulo fecondato, microiniezione di DNA con il transgene (circa 200 copie) iniettato all’interno del pronucleo maschile (fatto su ovuli fecondati) Gli ovuli microiniettati vengono impiantati nell’utero di una madre adottiva resa pseudogravida da maschio vasectomizzato. Dopo 3 settimane: progenie e analisi. Alcuni nati saranno transgenici. L’animale è transgenico perché il transgene è presente in tutte le cellule

25 Trasferimento genico tramite microiniezione nel pronucleo maschile di DNA libero
Inserzione ectopica (accoppiata con maschio vasectomizzato)

26 Trasferimento genico tramite microiniezione nel pronucleo maschile di DNA libero
Si microiniettano molti oociti fecondati (circa 200 oociti da 7-8 femmine dopo induzione superovulazione) Da ogni oocita fecondato si sviluppa un topo Individuazione topo transgenico

27 Trasferimento genico tramite microiniezione nel pronucleo
maschile

28 LA GHIANDOLA MAMMARIA COME BIOREATTORE
- Ha una densità cellulare di 1000 volte superiore ad un fermentatore Produce fino a 10g/l di proteina transgenica Una pecora produce litri ogni ciclo di lattazione - E’ più economico dei comuni fermentatori - Produce corrette modificazioni post-traduzionali - Facile la purificazione (nel latte ci sono poche proteine) Clonaggio a monte di un promotore espresso nella ghiandola mammaria (caseina, -lattoglobulina)

29 PROTEINE PRODOTTE IN FLUIDI BIOLOGICI DI ANIMALI USATI COME BIOREATTORI
Esempio: produzione di Fattore VIII umano nel latte del maiale. Il cDNA umano completo a valle del promotore del gene della proteina acida del siero del latte di maiale. Sintesi di fattore VIII nel tessuto mammario del maiale e secrezione della proteina nel latte Problematiche: Alta inefficienza del metodo di microiniezione nei pronuclei (in genere non più del 5% degli oociti iniettati dà progenie transgenica.

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33 Tecnologia del trasferimento nucleare
Riprogrammazione del nucleo che ripercorrerà l’intero sviluppo

34 Tecnologia del trasferimento nucleare
Clonazione animale: la creazione di Dolly

35 Tecnologia del trasferimento nucleare
Dolly, primo esperimento riuscito di clonazione animale (1997) Problematiche della clonazione animale: Alta inefficienza dei metodi di trasferimento nucleare - Alta frequenza di malattie congenite negli animali Invecchiamento prematuro degli animali Considerazioni etiche del pharming soprattutto nelle piante (OGM).

36 Problematiche della clonazione animale
Differenze dovute a fattori epigenetici e ambientali: colore del mantello, personalità. Studi con microarray di espressione su tessuti di animali e loro cloni: centinaia di geni con espressione anormale. La riprogrammazione del nucleo determina alta non vitalità dei cloni o forte alterazione dell’espressione genica