PROTEZIONE DEL GRUPPO -NH2

Presentazione sul tema: "PROTEZIONE DEL GRUPPO -NH2"— Transcript della presentazione:

1 PROTEZIONE DEL GRUPPO -NH2
I peptidi sono generalmente sintetizzati dal residuo C-terminale verso l’amminoacido N-terminale. Il gruppo N-a viene quindi protetto in maniera temporanea. I due gruppi più utilizzati sono:

2 Z (HBr/AcOH) Boc (TFA 30% in CH2Cl2) Bpoc (TFA 0,5% in CH2Cl2)
ESEMPIO DI 3 GRUPPI PROTETTIVI PER L’N CON STABILITA’ MODULATA NEI CONFRONTI DEGLI ACIDI Z (HBr/AcOH) Boc (TFA 30% in CH2Cl2) Bpoc (TFA 0,5% in CH2Cl2)

3 Introduzione del gruppo Boc
Condizioni di reazione: (Boc)2O, NaOH, H2O, 25°C; resa 75-95% (Boc)2O, TEA,MeOH o DMF, 40-50°C; resa 87-98% (Boc)2O, NaHCO3,MeOH, ultrasuoni; resa %

4 Rimozione del gruppo Boc
Condizioni di reazione: TFA/CH2Cl2 al 30%, a freddo HCl 3M/AcOEt, D (TFA = acido trifluoroacetico CF3COOH)

5 Introduzione del gruppo Fmoc
Esistono vari metodi per l’introduzione di Fmoc Condizioni di reazione: Fmoc-Cl, Na2CO3, diossano/H2O una soluzione di Fmoc-Cl in diossano viene aggiunta lentamente a 0°C ad una soluzione di Na2CO3al 10% contenente l’amminoacido. Si agita 1h a 0° e poi 5-18 h a T ambiente. Al termine della reazione si versa in una miscela H2O-ghiaccio e si estrae con Et2O per eliminare l’eccesso di Fmoc-Cl. La fase acquosa contenente l’amminoacido Fmoc sotto forma di sale sodico viene acidificata con HCl fino a pH 2 e l’amminoacido Fmoc precipita

6 Rimozione del gruppo Fmoc
Condizioni di reazione: piperidina, CH2Cl2 o DMF morfolina, CH2Cl2 o DMF cicloesilammina, CH2Cl2 ecc.ecc.

7 Metodi di attivazione e accoppiamento
X = buon gruppo uscente, elettron-attrattore

8 Metodo delle Anidridi miste
Reazione collaterale: formazione dell’uretano Per minimizzare questa reazione si può utilizzare per la formazione dell’anidride mista isobutilclorocarbonato

9 Vantaggi -elevata velocità di reazione a basse temperature facilità di esecuzione elevata purezza dei prodotti rese soddisfacenti facile disponibilità dei reagenti Svantaggi -elevata tendenza delle anidridi miaste a dare racemizzazione Si utilizza con residui amminoacidici protetti in posizione Na con gruppi del tipo uretano (es. Boc), che sfavoriscono la racemizzazione

10 Altri tipi di attivazione del gruppo COOH terminale:
-esteri attivi: es. RCOOCH2CN -azidi: es.

11 Metodo via carbodiimmidi

12 Metodo via carbodiimmidi:
DCC + HOBt

13 Metodo via carbodiimmidi: DCC + DMAP

14 Sintesi del dipeptide Phe-Phe

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16 I giorno: protezione della fenilalanina con il Boc
0,8 g di fenilalanina vengono posti in un pallone da 100 ml. Si aggiungono 2 equivalenti di NaOH 1M e si pone in agitazione magnetica. Si aggiungono lentamente 2 equivalenti di (Boc)2O (è un solido con p.f °C, va pesato velocemente in un piccolo becker e poi o lasciato liquefare e aggiunto con una pipetta pasteur, oppure aggiunto a piccole spatolate mentre è ancora solido). Al termine dell’aggiunta la reazione viene lasciata in agitazione a °C per 2 ore e mezza. La soluzione viene trasferita nell’imbuto separatore ed estratta una volta con AcOEt per rimuovere il (Boc)2O non reagito. Si acidifica quindi la fase acquosa con HCl diluito e si estrae il prodotto con AcOEt. Si anidrifica su sodio solfato e si tira a secco nel pallone da 100 ml tarato Calcolare la resa Determinare il valore di Rf del prodotto ottenuto

17 II giorno: liberazione della fenilalanina etilestere dal suo sale cloridrato
1,2 g di fenilalanina etilestere cloridrato vengono posti in una beuta e sciolti in acqua. Si basifica fino a pH 8 con una soluzione acquosa di NaHCO3 al 5%. La soluzione viene travasata in un imbuto separatore e l’ammina viene estratta con AcOEt. (controllo in TLC). La fase organica viene anidrificata su sodio solfato e tirata a secco al rotavapor in un pallone da 250 ml tarato e poi ulteriormente seccata con la pompa meccanica. Calcolare la resa Determinare il valore di Rf del prodotto ottenuto

18 III giorno: formazione del legame peptidico
I calcoli stechiometrici vanno fatti in base alla quantità di fenilalanina N-Boc ottenuta. Si lavora nel pallone da 100 ml che già contiene la fenilalanina N-Boc. Questa viene sciolta in circa 20 ml di diclorometano, si aggiunge 1 equivalente di fenilalanina etilestere e si mette in agitazione. Si aggiungono quindi 1 equivalente di DCC e 0,1 equivalenti di DMAP. Si lascia in agitazione fino a scomparsa dei prodotti di partenza (circa 2 ore). Si osserva la formazione di un precipitato bianco di dicicloesilurea. Terminata la reazione la dicicloesilurea viene eliminata per filtrazione (filtro a pieghe).

19 La soluzione viene posta in un imbuto separatore e lavata 1 volta con HCl diluito, 1 volta con una soluzione al 5% di NaHCO3 e 1 volta con una soluzione satura di NaCl. Si anidrifica su sodio solfato e si tira a secco. Trovare un eluente idoneo alla purificazione su colonna e impaccare la colonna. IV giorno Purificare il prodotto su colonna dopo aver scelto l’eluente adatto Calcolare la resa della reazione dopo la purificazione, Determinare il valore di Rf del prodotto ottenuto.

20 SINTESI PEPTIDICA IN FASE SOLIDA
Tale strategia prevede l’ancoraggio dell’a-amminoacido C-terminale ad una matrice polimerica mediante un legame estereo. Il primo a-amminoacido N-protetto è fatto reagire sul polimero sotto forma di sale (es. sale di Cesio, sale di trietilammonio) in CH2Cl2/DMF, attraverso una reazione di sostituzione nucleofila. L’allungamento del peptide avviene dalla parte dell’N, in direzione C N con il metodo step by step Come protezione per l’azoto di utilizza Z, che viene rimosso con HBr/AcOH, oppure BOC, che viene rimosso con TFA.

21 Resina di polistirene (copolimero di stirene contenente l’1% di divinilbenzene ne come agente reticolante), funzionalizzata mediante clorometilazione

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23 La rimozione del gruppo N-protettore deve avvenire senza dare reazioni indesiderate con il legame amminoacido-resina né con i gruppi protettori delle funzionalità presenti sulle catene laterali. Dopo aver rimosso il gruppo protettore della funzione amminica, l’amminoacido successivo è addizionato mediante una reazione di coupling Nel metodo di Merrifield la condensazione viene eseguita con DCC/HOBt. Il ciclo deprotezione/accoppiamento si ripete fino a completare la sintesi del peptide

24 I continui trattamenti acidi, richiesti per rimuovere ad ogni stadio il gruppo
protettore sull’ammina, determinano una parziale idrolisi del legame benzilestereo tra il peptide e la resina (quindi diminuzione della resa e formazione di prodotti secondari indesiderati. Al fine di migliorare la selettività di rimozione è stato introdotto un gruppo nitro sull’anello aromatico (gruppo p-nitro-benzilestere + resistente all‘ambiente acido). Problema: per la rimozione finale del peptide dalla resina è necessario utilizzare NaOH. Un ulteriore miglioramento è stato ottenuto utilizzando il gruppo protettore Boc al posto del gruppo Z (benzilossicarbonile). In questo caso la nitrazione dell’anello è superflua visto che il Boc viene rimosso in condizioni più blande (TFA al 25% in CH2Cl2). Il grippo amminico, dopo trattamento con TFA, è trasformato in base libera utilizzando TEA. Terminata la sintesi del peptide, questo viene staccato dalla resina con HF. Contemporaneamente vengono anche rimossi i gruppi protettivi acido-labili presenti sulle catene laterali

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26 Vantaggi rispetto al coupling in soluzione:
-si evitano i processi di purificazione (si effettua una semplice filtrazione) si riducono enormemente i tempi di produzione del peptide si evitano i problemi relativi alla solubilità dei peptidi Una volta completata la sintesi del peptide, questo viene allontanato dalla resina utilizzando HF (poco maneggevole, necessità di lavorare con contenitori in teflon) Per ovviare a questo problema sono state messe a punto nuove resine più sensibili agli acidi dalle quali poter staccare il peptide in condizioni più blande, es. la resina di Wang (che presenta la funzione p-alcossibenzilalcolica) dalla quale il peptide è rimosso con TFA. In questo caso le protezioni transienti vengono effettuate con Fmoc.

27 La presenza del sostituente p-alcossi sul gruppo benzilalcolico aumenta la sensibilità del legame estereo all’ambiente acido. La rimozione del peptide dalla resina può essere effettuata semplicemente con TFA. In questo caso i gruppi protettori della funzione a-amminica devono essere - o rimossi in ambiente acido più blando (es. gruppo Bpoc: bifenilisopropilossi-carbonile) (STABILITA’ MODULATA) - o rimossi in ambiente basico (es. gruppo Fmoc) (STABILITA’ ORTOGONALE)

28 Altre condizioni di rimozione del peptide dalla resina:
NH3/MeOH peptide carbossammide NaOH/MeOH peptide COO- NH2NH2 peptide idrazide MeOH/TEA peptide metilestere In questi casi i gruppi protettori delle catene laterali vanno sbloccati dopo rimozione del peptide dalla resina.

29 La sintesi in fase solida può essere effettuata
A) con la tecnica “batch”: la resina è inserita in un reattore di vetro munito di un setto poroso e i reagenti sono aggiunti e rimossi in maniera manuale o automatizzata. B) con la tecnica “ a flusso continuo”: la resina è contenuta in una colonna attraverso la quale i reagenti e i solventi sono riciclati e monitorati in continuo mediante sistemi automatizzati.

30 I supporti polimerici utilizzati sono dei gel piuttosto che dei solidi veri e propri. Ciò richiede il preventivo rigonfiamento del polimero nei solventi utilizzati per la sintesi in modo da facilitare l’entrata e l’uscita dei reagenti nelle particelle, per diffusione.

31 SCELTA DELLA RESINA deve contenere i siti reattivi sui quali accrescere la catena peptidica deve essere stabile nelle condizioni chimiche e fisiche della sintesi deve permettere un rapido e libero contatto tra i reagenti e la crescente catena peptidica deve essere facilmente separabile dalla fase liquida in ogni fase della sintesi deve essere altamente funzionalizzata al fine di ottenere rese alte di peptidi, minimizzando le interazioni tra le catene peptidiche

32 RIMOZIONE DEL PEPTIDE DALLA RESINA
RIMOZIONE STANDARD CON HF (per la strategia Boc) è la procedura più versatile e meno dannosa per la maggior parte dei peptidi. Il principale svantaggio è legato all’alta tossicità e alla reattività di HF, tanto da richiedere l’utilizzo di un’apparecchiatura ad hoc (in teflon). La rimozione viene condotta a 0-5°c in minuti in un contenitore chiuso munito di agitazione. L’impiego di ‘scavengers’ riduce la possibilità di reazioni collaterali (es. anisolo previene l’alchilazione del Trp ad opera carbocationi t-butilici)

33 ISOLAMENTO E PURIFICAZIONE DEI PEPTIDI DOPO RIMOZIONE DALA RESINA
Alla fine della reazione si evapora HF in corrente di N2. Si estrae la resina con TFA e si rimuove il peptide dalla resina mediante filtrazione a pressione ridotta. Si lava la resina per 2 volte con TFA, si combinano i filtrati e si precipita il peptide con etere etilico freddo. In alcuni casi è necessario evaporare il TFA prima di aggiungere etere etilico. Il precipitato viene filtrato sotto vuoto, lavato con etere etilico freddo, sciolto in un’adatta soluzione tampone e liofilizzato.

34 In alternativa il residuo solido viene triturato in presenza di t-butilmetiletere fino ad ottenere una sospensione, che viene centrifugata. Si decanta il surnatante e si ripetono le operazioni. Il residuo ottenuto viene sciolto in un’adatta soluzione tampone e liofilizzato. Per peptidi solubili in acqua dopo la precipitazione si aggiunge al residuo acqua, si trasferisce la miscela in imbuto separatore, si separa la fase acquosa dall’etere. La fase acquosa viene di nuovo estratta per due volte con etere etilico fresco e poi liofilizzata.