Metabolismo batterico

Presentazione sul tema: "Metabolismo batterico"— Transcript della presentazione:

1 Metabolismo batterico
Prof. Michele Segreto I.T.C. Primo Levi – Bollate Ultima revisione a.s

2 Forma ossidata Fe3+ forma ridotta Fe2+
I Citocromi Sono enzimi il cui coenzima presenza un gruppo eme recante uno ione ferro Forma ossidata Fe forma ridotta Fe2+ Esempio 2 cit.a3 (Fe2+) ½ O cit.a3 (Fe3+) O2- Nella respirazione aerobia il substrato di partenza, allo stato ridotto, viene completamente ossidato con la massima produzione di energia possibile 2 H+ O2- H2O + Prof. Michele Segreto I.T.C. Primo Levi – Bollate a.s

3 La reazione globale della respirazione è
Batteri ottengono energia dall’uso di substrati ridotti, sia organici (chemiorganotrofi), sia inorganici (chemiolitotrofi). Il substrato organico ridotto di elezione per i batteri eterotrofi è il glucosio (C6H12O6). La reazione globale della respirazione è C6H12O O H CO2 + energia (ATP) L’intero processo si svolge in due stadi Glicolisi (o via di Embden-Meyerhof) Ciclo di Krebs Prof. Michele Segreto I.T.C. Primo Levi – Bollate a.s

4 Meccanismo alternativo in Escherichia coli Acido lattico
Vista la mancanza di mitocondri nei batteri, il disordine citoplasmatico porta i batteri a svolgere il ciclo di Krebs in modo caotico e a volte ad avere una catena respiratoria ramificata Cit. o Ciclo di krebs Catena respiratoria O2 Cit. a2 Meccanismo alternativo in Escherichia coli Acido lattico Prof. Michele Segreto I.T.C. Primo Levi – Bollate a.s

5 Batteri chemiolitotrofi - autotrofi
Usano come substrati ridotti alcuni composti inorganici come H H2O H2S SO42- NH NO3- Fe Fe3+ A titolo di esempio si riporta il metabolismo di due generi batterici nitrificanti: Nitrosomonas e Nitrobacter 2 NH O NO H2O H+ NO ½ O NO3- Prof. Michele Segreto I.T.C. Primo Levi – Bollate a.s

6 Esempi di questo processo sono batteri denitrificanti e metanobatteri
La respirazione anaerobia: processo catabolico tipico dei batteri chemiorganotrofi, in cui il substrato di partenza allo stato ridotto viene ossidato attraverso un sistema di trasporto di elettroni e idrogeno e in cui l’accettore finale non è rappresentato da ossigeno Gli accettori finali più comuni sono nitrato NO3- , solfato SO42-, anidride carbonica CO2 Esempi di questo processo sono batteri denitrificanti e metanobatteri C6H12O NO CO N H ATP 4 H CO H2O CH4 Prof. Michele Segreto I.T.C. Primo Levi – Bollate a.s

7 C3H4O3 + NADH+H+ C2H5OH + CO2 + NAD+
La fermentazione: processo catabolico in cui il substrato iniziale, donatore di idrogeno ed elettroni, è un composto organico e l’accettore finale è rappresentato anch’esso da un composto organico, caratterizzato da un numero inferiore di atomi di carbonio C6H12O NAD ADP C3H4O NADH + H ATP Acido piruvico L’acido piruvico è la base per numerosi processi fermentativi: i più noti sono la fermentazione alcoolica (Saccharomyces cerevisiae, Zymomonas mobilis) e lattica (Steptococcus lactis, Lactobacillus bulgaricus) alcoolica C3H4O3 + NADH+H C2H5OH CO NAD+ lattica C3H4O3 + NADH+H C3H6O NAD+ Prof. Michele Segreto I.T.C. Primo Levi – Bollate a.s

8 La fotosintesi – i batteri fotolitotrofi
Attraverso l’uso di batterioclorofilla, questi batteri (cianobatteri o alghe azzure) sono in grado di captare la luce solare per svolgere un processo di riduzione della CO2 secondo il seguente schema CO H2O (CH2O) O H2O I batteri dei Generi Chromatium e Thiospirillum non usano acqua per ridurre l’anidride carbonica, ma acido solfidrico CO H2S (CH2O) S H2O Prof. Michele Segreto I.T.C. Primo Levi – Bollate a.s

9 La sintesi proteica Viene divisa in 5 fasi
Attivazione degli aminoacidi Inizio Allungamento Terminazione e rilascio del ribosoma Ripiegamento e modificazioni post-traduzione Prof. Michele Segreto I.T.C. Primo Levi – Bollate a.s

10 Il codice genetico Il codice del DNA è formato da 4 lettere (A, T, G e C) Il codice proteico è formato da 20 aminoacidi Il DNA può essere lo stampo su cui si basa la sintesi proteica solo prevedendo che triplette di basi azotate possano codificare il singolo aminoacido Prof. Michele Segreto I.T.C. Primo Levi – Bollate a.s

11 seconda lettera prima lettera U C A G UUU Phe UCU Ser UAU Tyr UGU Cys UUC UCC UAC UGC UUA Leu UCA UAA Stop UGA UUG UCG UAG UGG Trp CUU CCU Pro CAU His CGU Arg CUC CCC CAC CGC CUA CCA CAA Gln CGA CUG CCG CAG CGG AUU Ile ACU Thr AAU Asn AGU AUC ACC AAC AGC AUA ACA AAA Lys AGA AUG Met - inizio ACG AAG AGG GUU Val GCU Ala GAU Asp GGU Gly GUC GCC GAC GGC GUA GCA GAA Glu GGA GUG GCG GAG GGG Ala : alanina; Arg : arginina; Asn : asparagina; Asp : aspartato; Cys : cisteina; Gln: glutammina; Glu : glutammato; Gly : gllicina; His : istidina; Ile : isoleucina; Leu: leucina; Lys: lisina; Met : metionina; Phe : fenilalanina; Pro : prolina; Ser : serina; Thr : treonina; Trp : triptofano; Tyr : tirosina; Val : valina Prof. Michele Segreto I.T.C. Primo Levi – Bollate a.s

12 La lettura del codone va in direzione 5’ – 3’
Tra le diverse triplette portate dal messaggero (codoni) non ci sono segnali di interruzione. Il segnale di inizio è dato dal codone AUG, quindi normalmente l’aminoacido iniziale è metionina. La lettura del codone va in direzione 5’ – 3’ Il segnale di chiusura (codoni di terminazione) del gene è dato dalle triplette STOP. Il fatto che più di una tripletta codifichi il singolo aminoacido ha dato origine al termine di “codice degenerato”. Il codice genetico è universale, ossia praticamente tutte le specie viventi, compresi i batteri, studiate gli aminoacidi sono 20 e sono codificati dalle stesse triplette. La terza base del codone spesso è poco influente nel decidere l’amminoacido corrispondente. La sua funzione sembra essere quella di velocizzare il distacco del tRNA dall’mRNA, visto il suo legame debole nell’appaiamento. La tripletta complementare del codone è chiamata anticodone. Ogni transfer RNA (tRNA) porta un anticodone specifico per l’amminoacido corrispondente. Prof. Michele Segreto I.T.C. Primo Levi – Bollate a.s

13 Fase 1 : attivazione aminoacidi
Avviene nel citoplasma Serve ad attivare il gruppo carbossilico dell’amminoacido Questa fase è seguita da enzimi chiamati aminoacil-tRNA sintetasi Gli enzimi sono attivati da Mg2+ Prof. Michele Segreto I.T.C. Primo Levi – Bollate a.s

14 Fase 2 : inizio L’mRNA si lega alla subunità minore del ribosoma
Alla tripletta di inizio si lega il primo tRNA Le proteine che seguono questo processo sono dette “fattori di inizio” Prof. Michele Segreto I.T.C. Primo Levi – Bollate a.s

15 Fase 3 : allungamento Il secondo codone viene letto dal ribosoma, che richiama il tRNA complementare. Il primo aminoacido, di solito metionina, viene legato con il legame peptidico al secondo aminoacido. Il primo tRNA, libero dall’aminoacido trasportato, si stacca dal codone e torna libero nel citoplasma. Il rRNA si sposta di 3 basi lungo il messaggero. Al terzo codone si lega il tRNA corrispondente. L’amminoacido corrispondente viene legato al secondo amminoacido Il secondo tRNA, libero dall’aminoacido trasportato, si stacca dal codone e torna libero nel citoplasma. Prof. Michele Segreto I.T.C. Primo Levi – Bollate a.s

16 Fase 4 : terminazione Quando il ribosoma legge il codone Stop termina di leggere il messaggero e libera la catena polipeptidica prodotta Le proteine che avviano il distacco vengono chiamate “fattori di rilascio” Il ribosoma inizia un nuovo ciclo produttivo Prof. Michele Segreto I.T.C. Primo Levi – Bollate a.s

17 Fase 5 : ripiegamento Il polipeptide, per poter essere funzionante, deve prendere la sua forma tridimensionale definitiva A volte alla catena amminoacidica vengono aggiunti gruppi chimici funzionali (gruppi acetile, fosfato, metile, ecc.) Altre volte vengono rimossi atomi o molecole, anche amminoacidi, in grado di attivare o rendere più efficiente la proteina Prof. Michele Segreto I.T.C. Primo Levi – Bollate a.s

18 Alcune curiosità Una cellula di Escherichia coli contiene oltre ribosomi, che costituiscono il 25% del peso secco della cellula; I 2/3 del peso del ribosoma è dato da RNA ribosomale ed 1/3 da proteine; La funzione delle proteine non è stata ancora completamente chiarita, ma probabilmente la più importante è di tipo strutturale; Il ribosoma batterico è costituito da 2 subunità, denominate rispettivamente 50 e 30 S, con un diametro di 23 nm, mentre il ribosoma eucariotico è più grande con velocità di sedimentazione di 60 e 40 S Prof. Michele Segreto I.T.C. Primo Levi – Bollate a.s

19 RNA transfer Si tratta di molecole RNA piccole, formate da 73 – 93 nucleotidi, con pm da – Ogni cellula contiene almeno 32 tipi di tRNA (alcuni riconoscono più di un codone) La forma, definita a trifoglio, viene schematizzata con un braccio lungo a cui è legato in cima l’amminoacido corrispondente all’anticodone Dalla parte opposta si trova il braccio con l’anticodone specifico A rinforzo della struttura troviamo 2 anse o bracci Prof. Michele Segreto I.T.C. Primo Levi – Bollate a.s

20 Attivazione del tRNA Avviene nel citoplasma
L’enzima responsabile dell’operazione è chiamato amminoacil-tRNA sintetasi Per ogni amminoacido c’è un diverso enzima responsabile L’aggancio dell’amminoacido al suo tRNA richiede il consumo di 1 ATP degradato però ad AMP ATP AMP + 2 Pi L’operazione raggiunge due scopi: attivare il messaggero e fare in modo che possa arrivare nella posizione corretta sul messaggero I possibili errori nello svolgimento del processo sono corretti dalla tRNA sintetasi (proofreading o correttore di bozze) La correzione è possibile solo a questo livello, una volta fatto lo sbaglio e non corretto successivamente nelle fasi successive non c’è modo di porre rimedio Prof. Michele Segreto I.T.C. Primo Levi – Bollate a.s

21 Inizio sintesi proteica
L’importanza del codone AUG, e quindi della metionina, nell’inizio della sintesi proteica è testimoniato dal fatto che troviamo 2 diversi tRNA per la metionina, uno solo per il codone di inizio sequenza (tRNA Met), l’altro per i codoni di centro messaggio (tRNA fMet) Prof. Michele Segreto I.T.C. Primo Levi – Bollate a.s

22 Formazione del complesso di inizio nei batteri
I fattori di inizio IF-1 e IF-3 si legano al sito P, lo attivano e a quel punto il messaggero si lega alla subunità minore del ribosoma. Al sito P si appoggia il codone AUG che codifica metionina. Al codone si attacca il transfer UAC che trasporta fMet. Il processo è controllato dal fattore di inizio IF-2, attivato da GTP che nel dare energia al processo si trasforma in GDP, liberando una molecola di Pi Prof. Michele Segreto I.T.C. Primo Levi – Bollate a.s

23 Il secondo amminoacil-tRNA entra nel ribosoma, si lega al sito A su cui si trova la seconda tripletta di nucleotidi. Il tRNA viene attivato da un fattore di allungamento, indicato con Tu, a sua volta caricato con GTP, che perdendo un Pi si trasforma in GDP fornendo l’energia necessaria al processo

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25 Tappe di inizio sintesi proteica
La subunità minore del ribosoma viene attivata mediante l’attacco di due fattori di inizio (fattore 1 e 3) al sito amminoacilico A ed in luogo periferico (negli eucarioti i fattori di inizio sono almeno 9) Il messaggero viene posizionato sulla subunità. La direzione 5’ viene indicata dalla presenza ad inizio messaggero di 4 – 9 basi puriniche (sequenza di Shine-Dalgarno) Il tRNA Met viene posizionato sul codone di inizio sul sito P Vengono liberati i fattori di inizio Il ribosoma si ricompone con l’aggiunta della subunità maggiore Prof. Michele Segreto I.T.C. Primo Levi – Bollate a.s

26 Allungamento Il tRNA corrispondente alla seconda tripletta, al momento appoggiata sul sito A, viene posizionato; Il GTP (guanosina tri-fosfato), legato al tranfer come attivatore, viene idrolizzato La peptidil trasferasi unisce i due amminoacidi con il legame peptidico; il primo tRNA resta privo del suo amminoacido (traslocazione); Il ribosoma scivola di una tripletta verso la terminazione 3’; Giunto sul sito E, il tRNA scarico (deacilato) si stacca dal messaggero Un nuovo tRNA, complementare alla tripletta letta dal sito A, si appoggia sul messaggero; Una nuova traslocazione ha inizio Prof. Michele Segreto I.T.C. Primo Levi – Bollate a.s

27 Terminazione Dopo una serie di traslocazioni, il ribosoma legge il segnale di fine messaggio Un fattore di rilascio occupa il sito A A questo punto i fattori di terminazione (o di rilascio) idrolizzano l’ultimo legame che tiene unita la catena polipeptidica con l’ultimo tRNA, in posizione P Il tRNA scarico viene rilasciato dal sito P Il ribosoma si divide nelle due subunità Tutti i componenti vengono rilasciati e liberano il messaggero, che può ricominciare tutta l’operazione Prof. Michele Segreto I.T.C. Primo Levi – Bollate a.s

28 Regolazione dell’espressione genica
Processo 1: trascrizione Processo 2: modificazioni del mRNA post-trascrizione Processo 3: degradazione del mRNA Processo 4: traduzione Processo 5: modificazione delle proteine post-traduzione Processo 6: trasporto della proteina Processo 7: degradazione proteica Prof. Michele Segreto I.T.C. Primo Levi – Bollate a.s

29 I principi della regolazione genica
Alcuni geni in alcune cellule sono sempre attivi: questi sono chiamati geni costitutivi Il carattere non sottoposto a regolazione è chiamato espressione genica costitutiva I caratteri sottoposti a regolazione ambientale sono detti espressione genica regolata I prodotti dovuti a caratteri regolabili sono detti inducibili Il processo di attivazione dei geni regolabili è detto induzione Quando il gene viene bloccato si parla di carattere reprimibile Il processo che blocca il gene che determina il carattere da fermare è detto repressione Prof. Michele Segreto I.T.C. Primo Levi – Bollate a.s

30 RNA polimerasi si lega al DNA
La trascrizione avviene solo se l’enzima riesce a legarsi al sito promotore L’interazione tra promotore ed RNA non è mono-dimensionale, può variare a seconda delle richieste della cellula: più il prodotto è richiesto e maggiore è la velocità di sintesi I fattori di specificità modificano la capacità dell’RNA polimerasi di legarsi al promotore e dare inizio alle operazioni I repressori bloccano l’interazione tra enzima e promotore Gli attivatori facilitano l’operazione Prof. Michele Segreto I.T.C. Primo Levi – Bollate a.s

31 Se il repressore è legato all’operatore, l’RNA polimerasi si blocca
Nei batteri i siti a cui si legano i repressori sono detti operatori e in genere sono vicini al promotore Se il repressore è legato all’operatore, l’RNA polimerasi si blocca Il blocco dell’attività enzimatica è detto regolazione negativa L’effettore è una molecola generalmente di piccole dimensioni che funge da segnale molecolare: si lega al repressore e lo modifica strutturalmente Il legame effettore – repressore modifica la velocità della trascrizione. A volte l’interazione effettore – repressore modifica la conformazione tridimensionale della molecola finale e la lettura può avere inizio Prof. Michele Segreto I.T.C. Primo Levi – Bollate a.s

32 Regolazione negativa a) Il repressore è legato all’operatore, che è parte del promotore. La molecola segnale si lega al repressore e si libera il promotore per cui inizia la sintesi proteica b) Il repressore è legato all’operatore insieme alla molecola regolatrice. Il segnale esterno provoca il distacco della proteina regolatrice dal repressore che quindi libera il promotore per cui inizia la sintesi proteica

33 Gli attivatori, una volta legati al DNA, aumentano la velocità di sintesi (regolazione positiva)
I siti a cui si legano gli attivatori, nei procarioti, è normalmente vicino al promotore A volte negli eucarioti si trovano attivatori legati a siti detti enhancer (incrementatori) distanti dal promotore A volte gli attivatori vengono attivati dalla molecola segnale, altre volte vengono bloccati da tale molecola. Pertanto la velocità di trascrizione può essere sia velocizzata, sia decrementata dalla presenza del segnale. Prof. Michele Segreto I.T.C. Primo Levi – Bollate a.s

34 Regolazione positiva c) l’attivatore si lega al promotore e parte la trascrizione. La molecola segnale si lega all’attivatore, l’attivatore si stacca dal promotore e la sintesi si blocca d) l’attivatore è legato al promotore insieme alla molecola segnale. Quando il segnale si stacca dall’attivatore, questo si stacca dal promotore e la sintesi si blocca

35 Gli operoni Nei procarioti si è trovato che diversi geni legati ad un unico processo di sintesi proteica sono riuniti in un’unica unità detta operone L’operone comprende diversi geni (da 2 a 6, a volte 20), un unico sito per l’attivatore, uno per l’operatore-repressore ed un solo promotore Lo studio di tali operoni è iniziato con l’osservazione dell’operone lac in Escherichia coli nel 1941 da J. Monod Prof. Michele Segreto I.T.C. Primo Levi – Bollate a.s

36 Monod allestì colture di batteri chemioeterotrofi: il terreno di coltura era minerale e veniva aggiunto uno zucchero per volta L’aggiunta di glucosio portava ad una crescita piuttosto veloce della colonia batterica, mentre l’aggiunta di lattosio (un disaccaride formato da galattosio e glucosio) causava un periodo di latenza più lungo ma una crescita altrettanto rigogliosa In blu la crescita normale della colonia con glucosio, in rosa con substrato di difficile assimilazione Mettendo entrambi gli zuccheri nel terreno di coltura si aveva una prima crescita veloce, sovrapponibile a quella con il glucosio, a cui segue un momento di pausa ed una seconda fase di crescita

37 L’ipotesi di Monod fu che E
L’ipotesi di Monod fu che E.coli utilizzava glucosio fintanto che trovava questo zucchero come fonte di carbonio, e solo quando il glucosio termina, il battero rivolge le sue attenzioni al lattosio. A questo tipo di crescita venne dato il nome di crescita diauxica

38 L’ipotesi, poi confermata dai lavori di laboratorio, era che E
L’ipotesi, poi confermata dai lavori di laboratorio, era che E.coli utilizzava enzimi costitutivi, quelli per l’utilizzo del glucosio che il battero ha sempre presenti nella cellula, e quando lo zucchero semplice termina, vengono prodotti gli enzimi in grado di utilizzare il lattosio (enzimi inducibili) Nel 1961 Jacob e Monod (premi Nobel per la medicina nel 1965) presentarono il primo modello di regolazione genica, l’operone lattosio. Lo studio parte dall’osservazione che in E.coli un solo difetto genetico porta alla perdita dei 3 enzimi codificati da quello che sarà poi chiamato operone lattosio Prof. Michele Segreto I.T.C. Primo Levi – Bollate a.s

39 L’operone lattosio Comprende i geni b-galattosidasi, galattoside permeasi e tiogalattoside transacetilasi b-galattosidasi: sistema enzimatico complesso in grado di catalizzare due reazioni: la principale porta all’idrolisi del lattosio con liberazione di galattosio e glucosio, e la secondaria in grado di convertire il lattosio in allattosio Allattosio è l’induttore per l’intero processo galattoside permeasi: è una proteina di membrana con la funzione di catturare il lattosio presente nel mezzo di coltura tiogalattoside transacetilasi: sembra che abbia la funzione di eliminare i tiogalattosidi tossici fatti entrare dalla permeasi Prof. Michele Segreto I.T.C. Primo Levi – Bollate a.s

40 Questo modello è detto di regolazione per induzione
I 3 geni sono adiacenti Il modello è di regolazione negativa: il repressore, legato al DNA, inibisce la trascrizione in assenza di lattosio. Quando entra lattosio nella cellula, viene trasformato in allattosio dalle poche molecole di galattossidasi presenti nel citoplasma. La molecola segnale (l’induttore allattosio) si lega al repressore e lo rimuove: da quel momento inizia la lettura del DNA Prof. Michele Segreto I.T.C. Primo Levi – Bollate a.s

41 Ma in che modo l’associazione lattosio + glucosio causa la crescita diauxica?
Si è scoperto negli anni ’70 che l’operone lac è attivato dall’induttore ma è sottoposto ad un ulteriore meccanismo di controllo dovuto ad una proteina detta attivatore CAP o CRP La proteina CRP è codificata da un gene distante dall’operone lac Questa proteina viene sintetizzata in forma inattiva e attivata da AMP ciclico (cAMP) La concentrazione di CRP inattivo nella cellula è costante La concentrazione di cAMP è basso con concentrazioni intracellulari alte di glucosio, si alza con l’abbassarsi delle concentrazioni di glucosio Quindi cAMP funge da messaggero in grado di avvisare E.coli della situazione cellulare del glucosio Prof. Michele Segreto I.T.C. Primo Levi – Bollate a.s

42 Viene consumato il glucosio a disposizione
Quindi il controllo dell’operone è doppio: alta concentrazione di glucosio porta a basse concentrazioni di cAMP Viene consumato il glucosio a disposizione Quando il glucosio è ormai poco concentrato, si alza la concentrazione di cAMP A questo punto viene attivata la proteina CRP CRP attivata si lega all’operone su un sito a lato del promotore Parte la sintesi delle proteine codificate dall’operone Ma se non c’è lattosio nell’ambiente l’operone è comunque bloccato Se c’è lattosio la galattosidasi ne trasforma una piccola parte in allolattosio che toglie il repressore all’operone legandosi ad esso A questo punto parte davvero la sintesi degli enzimi dell’operone e il lattosio viene consumato Viene liberato il repressore che blocca l’operone Prof. Michele Segreto I.T.C. Primo Levi – Bollate a.s

43 Modello dell’operone triptofano
È la tipica repressione da prodotto finale In pratica quando manca il prodotto codificato dall’operone (5 geni), il repressore è inattivo L’alta concentrazione del prodotto (in questo modello il triptofano che funge da corepressore) porta all’attivazione del repressore Il repressore attivato si lega all’operatore e si blocca la sintesi proteica legata all’intero operone Anche per questo operone troviamo un attenuatore: si tratta di una sequenza leader (162 nucleotidi all’estremità del messaggero) che comprende una coppia di triplette che codifica due codoni per il triptofano, disposti in successione Se il triptofano è ben presente saranno presenti tRNA carichi dell’amminoacido Il processo di trascrizione è contemporaneo al processo della traduzione Prof. Michele Segreto I.T.C. Primo Levi – Bollate a.s

44 La caratteristica peculiare del modello operone trp è legata al fatto che la regolazione non è solo “produco – non produco” ma c’è anche la possibilità di regolare la velocità di tale processo Il controllo su tale meccanismo è dato da un processo detto “attenuazione della trascrizione” La trascrizione viene attenuata quando la richiesta dell’amminoacido è scarsa o ci sono molte molecole presenti nel substrato Il meccanismo funziona in base alla presenza nella regione leader di 4 sequenze (chiamate semplicemente sequenze 1, che comprende i due codoni per triptofano-tRNA, 2, 3 e 4) in grado di regolare la velocità di produzione dell’amminoacido Modelli simili vengono applicati per tutte le catene metaboliche procariotiche che portano alla produzione di amminoacidi o di molecole che si trovano in condizioni simili Prof. Michele Segreto I.T.C. Primo Levi – Bollate a.s

45 Se nella cellula il livello del triptofano è alto, viene letta tutta l’area del leader ma i segmenti successivi (chiamati 3 e 4) si chiudono formando una forcina (o stelo) con l’impedimento alla continuazione della trascrizione dei geni strutturali. Quindi si ha di fatto la creazione di un terminatore in grado di bloccare la trascrizione degli altri geni Se la quantità di triptofano è bassa lo stelo viene formato tra i segmenti 2 e 3, quindi più a monte; il ribosoma, in seguito alla carenza del tRNA legato al triptofano, trova i codoni iniziali liberi (segmento 1) per cui inizia la lettura dei geni codificati dal codone Questo modello non è esportabile pari pari agli eucarioti, che avendo una membrana nucleare e la divisione tra i processi di trascrizione e traduzione, Prof. Michele Segreto I.T.C. Primo Levi – Bollate a.s