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PubblicatoLiliana Parrish Modificato 6 anni fa
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Capacitazione in vitro dello spermatozoo e Reazione Acrosomiale
Scuola di Specializzazione in Fisiopatologia della Riproduzione degli Animali Domestici (AA 2016/17) Corso di Biotecnologie della Riproduzione Prof.ssa M.E. Dell’Aquila Capacitazione in vitro dello spermatozoo e Reazione Acrosomiale Albrizio et al. Reproduction 2004
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Sommario Definizioni Aspetti storici
Fisiologia capacitazione/AR in vivo Procedure in vitro Valutazione efficienza procedure in vitro Uso di seme fresco e congelato
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Definizioni: Capacitazione
Insieme dei cambiamenti fisiologici reversibili ai quali lo spermatozoo va incontro quando entra in contatto con il tratto genitale femminile: Riorganizzazione proteine di membrana; Metabolismo fosfolipidi di membrana; Riduzione livelli di colesterolo; Iperattivazione
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Definizioni: Reazione Acrosomiale
Evento esocitotico irreversibile degli enzimi litici contenuti nell’acrosoma
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Aspetti storici Austin, 1951 Chang, 1951 Iritani and Niwa, 1971
Yanagimachi, 1990
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Maturazione morfo-funzionale dello spermatozoo
Tratto riproduttivo maschile Maturazione meiotica Maturazione morfologica Acquisizione della motilità Acquisizione antigeni per capacità fecondante Tratto riproduttivo femminile Capacitazione/Reazione Acrosomiale
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Flesh & Gadella. Biochim Biophys Acta 2000.
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Flesh & Gadella Biochim Biophys Acta 2000.
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A N I C Capacitazione = Eparina e = Calmodulina
= Proteina plasma seminale = Fosfolipide colinico
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Reazione Acrosomiale Fusione membrana plasmatica e acrosomiale esterna
Esocitosi enzimi litici acrosomiali
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Capacitazione del Seme e Reazione Acrosomiale
Legame reversibile proteine plasma seminale alla membrana dello spz Legame glicosamminoglicani a proteine plasma seminale Liberazione siti fosfolipidi colinici Modificazione configurazione sterica calmodulina Ingresso ioni calcio Attivazione fosfolipasi A Sintesi lisofosfatidilcolina Fusione membrana plasmatica con membrana acrosomiale esterna
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Flesh & Gadella. Biochim Biophys Acta 2000.
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Procedure di capacitazione in vitro Separazione della frazione ad alta motilità
Percoll gradient Swim up
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Flesh & Gadella. Biochim Biophys Acta 2000.
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Valutazione delle procedure di capacitazione
Staining techniques Microscopia in fluorescenza: CTC-Hoechst, Flow Cytometry Oocyte penetration tests Microscopia elettronica: penetrazione di ZP congelate Sperm-zona binding Microscopia in fluorescenza
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HOECHST 33258 B A PROTOCOLLO SPERIMENTALE:
COLORANTE SOPRAVITALE FLUORESCENTE NON INTERCALANTE CON SPECIFICITA’ PER ADENINA E TIMINA . EMETTE LUCE DI COLORE CELESTE/BLU A 420 nm SE COLPITO DA LUCE CON LUNGHEZZA D’ONDA nm PERMETTE DI EVIDENZIARE SPERMATOZOI VIVI (A) OPPURE MORTI (B), IN BASE ALL’ INTEGRITA’ DELLA MEMBRANA E QUINDI ALLA CAPACITA’ O MENO DI POTER PENETRARE NELLA CELLULA B A PROTOCOLLO SPERIMENTALE: aggiungere 0.5 ml di soluzione Hoechst (10 mg/ml) a 50 ml di seme derivante dal trattamento con la sostanza da testare incubare per 2’, aggiungere 500 ml di 2% PVP e centrifugare a 900xg per 5’ rimuovere il sovranatante e risospendere il pellet in 45 ml di TALP, quindi procedere con il trattamento con CTC Albrizio et al. Reproduction 2004
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CHLORTETRACYCLINE (CTC)
E’ UN ANTIBIOTICO IN GRADO DI LEGARSI A REGIONI IDROFOBICHE DELLA MEMBRANA IN MODO CALCIO-DIPENDENTE. EMETTE LUCE DI COLORE VERDE A 470 nm SE COLPITO DA LUCE CON LUNGHEZZA D’ONDA nm PERMETTE DI EVIDENZIARE SPERMATOZOI NORMALI (A), CAPACITATI (B) E CON REAZIONE ACROSOMIALE (C), IN BASE AI DIVERSI PATTERNS CHE SI MANIFESTANO PER I CAMBIAMENTI DELLA MEMBRANA A B C Albrizio et al. Reproduction 2004 PROTOCOLLO SPERIMENTALE: sciogliere g di CTC e g di L-cisteina in una soluzione contenente Tris 20mM, NaCl 130mM a pH=7.8 miscelare 50 ml di spermatozoi derivanti al trattamento con Hoechst con 50ml di soluzione di CTC aggiungere 15 ml di glutaraldeide al 12.5% in Tris 1M pH=7.0 per fissare montare i vetrini mettendo 5 ml della miscela spermatica e osservare entro 1 ora
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Analisi citofluorimetriche
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Merocyanine 540/Yo-Pro-1 staining Analisi citofluorimetrica dello stato di capacitazione
Cellule spermatiche in Tyrodes Medium/bicarbonato contenente: 2.7 M di Merocyanine 540 (sensibile alle variazioni fosfolipidiche della membrana) 25nM di Yo-Pro-1 (specifico per gli acidi nucleici relativamente impermeabile alle membrane) 0.5mg/ml PVA 0.5mg/ml PVP Incubare in un bagnetto riscaldato a 37°C per 30 min Analisi citofluorimetrica della capacitazione è condotta con FACS Vantage SE: Merocyanine 540/Yo-Pro-1 sono eccitati da un laser a ioni di Argon ad una =488 nm. La fluorescenza è misurata a di emissione rispettivamente a 520 e 575 nm. Vengono analizzate spermatozoi al secondo.
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FITC-PNA/PI staining Analisi citofluorimetrica della reazione acrosomiale Incubare le cellule spermatiche con 5g/ml di FITC-PNA (marker per la reazione acrosomiale) e 1M di PI (marker per le cellule morte). Analisi con FACS scan
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SYBR 14/PE-PNA/PI staining
Valutazione citofluorimetrica simultanea della vitalità e dell’integrità dell’acrosoma Aggiungere ad 1 ml di seme diluito: 100 nM SYBR-14 (*componente A, diluito 10 volte in DMSO) 2.5 mg/ml PE-PNA (in tampone come Nagy et al., 2003 ) 12 mM PI (*componente B non diluito) * LIVE/DEAD Sperm Viability kit, Molecular Probes, OR, USA Nagy et al., 2003 Biol Reprod 68,
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Uso di seme fresco e congelato
Le procedure di congelamento incidono sulla vitalità del seme Le procedure di congelamento incidono sullo stato di capacitazione e di reazione acrosomiale degli spermatozoi
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Letture consigliate Gordon I.“Capacitating bovine sperm” In: “Laboratory production of cattle embryos” CABI Publishing Dublin 2003 II ed., Chapter 5. Flesh FM & Gadella BM. Dynamics of the mammalian plasma membrane in the process of fertilization. Biochim Biophys Acta 2000; 1469: Rathi et al.,2001. Evaluation of in vitro capacitation of stallion spermatozoa. Biol Reprod 65: Nagy et al., A triple stain flow cytometric method to assess plasma- and acrosome-membrane integrity of cryopreserved bovine sperm … Biol Reprod 68:
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