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CARATTERISTICHE VETTORE PLASMIDICO DI CLONAGGIO
Origine autonoma di replicazione (ORI) - Geni per la selezione: resistenza ad uno o due antibiotici - Altri geni per la selezione del plasmide ricombinante - Siti multiplo di clonaggio
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oppure elettroporazione
T. A. Brown, BIOTECNOLOGIE MOLECOLARI, Zanichelli editore S.p.A Copyright © 2007
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su terreno con antibiotico
Piastramento su terreno con antibiotico T. A. Brown, BIOTECNOLOGIE MOLECOLARI, Zanichelli editore S.p.A Copyright © 2007
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Selezione per la presenza del vettore: resistenza ad antibiotico
T. A. Brown, BIOTECNOLOGIE MOLECOLARI, Zanichelli editore S.p.A Copyright © 2007
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VETTORI DI CLONAGGIO PER E. coli
Tipo Dimensioni (kb) Dimensioni inserto (kb) Sistema selezione Metodo introduzione Plasmidi pBR , Antibiotici Trasformazione pUC , Amp + Lac Z Trasformazione Batteriofago lambda Infezione Fago filamentoso M , Lac Z Trasfezione Cosmidi Antibiotico Infezione Cromosomi artificiali fino a Amp (CM) + Lac Z Elettroporazione BAC
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Plasmide pBR322 Griffiths et al., GENETICA 6/E, Zanichelli Editore S.p.A. Copyright © 2006
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pBR322: screening delle colonie ricombinanti
Griffiths et al., GENETICA 6/E, Zanichelli Editore S.p.A. Copyright © 2006
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Griffiths et al. , GENETICA 6/E, Zanichelli Editore S. p. A
Griffiths et al., GENETICA 6/E, Zanichelli Editore S.p.A. Copyright © 2006
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Vettori plasmidici (pUC18)
Griffiths et al., GENETICA 6/E, Zanichelli Editore S.p.A. Copyright © 2006
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Il gene LacZ codifica per il polipeptide β-galattosidasi (1021 a.a.)
Griffiths et al., GENETICA 6/E, Zanichelli Editore S.p.A. Copyright © 2006
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Non c’è complementazione
β-galattosidasi ATTIVA Ceppo di E.coli: gene Lac Z mutante: peptide parziale Vettore pUC: gene LacZ mutante: peptide parziale Complementano Ceppo di E.coli Lac Z mutante Vettore LacZ interrotto dal clonaggio Non c’è complementazione β-galattosidasi INATTIVA β-galattosidasi ATTIVA Colonie Blu Metabolizzato Terreno + X-Gal Colonie bianche Non metabolizzato β-galattosidasi INATTIVA X-Gal: 5-Bromo-4-Cloroindolil-β-galattoside (incolore) Griffiths et al., GENETICA 6/E, Zanichelli Editore S.p.A. Copyright © 2006
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(induttore)
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Metodi di inserimento dei vettori ricombinanti nelle cellule batteriche
Trasformazione: plasmidi (DNA) trasformano cellule procariotiche rese competenti Infezione: fagi (DNA con capsidi) che lisano il batterio Trasduzione: cosmidi (DNA con capsidi) che nel batterio si comportano come plasmidi Trasfezione: come una trasformazione ma con DNA fagico senza capsidi per es: per introdurre la forma replicativa di M13 a doppio filamento
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BATTERIOFAGO LAMBDA COME VETTORE DI CLONAGGIO
Lambda w.t. = 50 Kb Estremità “cos” di 12 nt per circolarizzazione Infezione di E. coli
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Griffiths et al. , GENETICA 6/E, Zanichelli Editore S. p. A
Griffiths et al., GENETICA 6/E, Zanichelli Editore S.p.A. Copyright © 2006
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Batteriofago lambda
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Batteriofago lambda Lambda w.t. = 50 Kb
Lambda di sostituzione: eliminati geni ciclo lisogenico, inserti fino a 23 Kb Clonaggio di frammenti DNA esogeno e packaging in vitro Infezione Griffiths et al., GENETICA 6/E, Zanichelli Editore S.p.A. Copyright © 2006
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Creati siti unici per clonaggio
Formazione di catenani T. A. Brown, BIOTECNOLOGIE MOLECOLARI, Zanichelli editore S.p.A Copyright © 2007
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Fago difettivo (siti cos alterati) non può replicarsi ma produce
proteine per i capsidi che possono essere purificate Fagi difettivi che da soli non producono capsidi. Le singole proteine possono essere purificate Griffiths et al., GENETICA 6/E, Zanichelli Editore S.p.A. Copyright © 2006
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CLONAGGIO IN BATTERIOFAGI
Griffiths et al., GENETICA 6/E, Zanichelli Editore S.p.A. Copyright © 2006
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Screening placche di lisi
Infezione fagica Screening placche di lisi Griffiths et al., GENETICA 6/E, Zanichelli Editore S.p.A. Copyright © 2006
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Fago filamentoso La cellula batterica non viene lisata!
Griffiths et al., GENETICA 6/E, Zanichelli Editore S.p.A. Copyright © 2006
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Fago filamentoso
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Griffiths et al. , GENETICA 6/E, Zanichelli Editore S. p. A
Griffiths et al., GENETICA 6/E, Zanichelli Editore S.p.A. Copyright © 2006
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Clonaggio in cosmidi Formazione di catenani Formazione di colonie
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CROMOSOMI ARTIFICIALI DI BATTERIO (BAC)
Fattore di fertilità F di E. coli ha 3 geni (parA, parB, repE) per la replicazione e per mantenere basso il numero di copie del fattore (1- 2 per cellula) Gene per la resistenza al cloramfenicolo (per selezione trasformanti) Siti di clonaggio nel gene LacZ (identificazione ricombinanti per complementazione) Inserto tra 150 e 350 Kb Integrazione batterica per elettroporazione Promotori per la trascrizione (T7 e SP6) Griffiths et al., GENETICA 6/E, Zanichelli Editore S.p.A. Copyright © 2006
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Griffiths et al. , GENETICA 6/E, Zanichelli Editore S. p. A
Griffiths et al., GENETICA 6/E, Zanichelli Editore S.p.A. Copyright © 2006
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VETTORI DI CLONAGGIO IN LIEVITO: YAC (YEAST ARTIFICIAL CHROMOSOME)
Saccharomyces cerevisiae: 16 cromosomi da 250 kb a 2 Mb
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Sferoplasting: liticasi
Inserto: 300 kb – 1 Mb Sferoplasting: liticasi Griffiths et al., GENETICA 6/E, Zanichelli Editore S.p.A. Copyright © 2006
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ARS = sequenze autonome di replicazione
SUP 4 CEN = Centromero ARS = sequenze autonome di replicazione TRP1 e URA3 per selezione di molecole con entrambi i bracci URA 3 = gene per un enzima della sintesi dei nucleotidi pirimidinici TRP1 = gene per un enzima della sintesi del triptofano SUP 4 = gene per il tRNA per la tirosina che sopprime la mutazione non senso “ochre” nel gene ADE2 del ceppo di lievito ADE2 = gene per la sintesi di adenina: un precursore (fosforibosil amminoimidazolo) che sta a monte nella via biosintetica si accumula e dà colonie rosse S. cerevisiae (w.t): URA (-), TRP (-), ADE2 (-) per mutazione “ochre”. Nel codone UAU (tyr) nel gene ADE2 si verifica la mutazione “ochre” UAA “non senso” e diventa ADE2(-): l’adenina non viene sintetizzata e si accumula come premetabolita rosso
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S. cerevisiae (w.t): crescono se nel in terreno c’è uracile e triptofano
S. cerevisiae (w.t): URA (-), TRP (-), ADE2 (-) per mutazione “ochre” accumulo di premetabolita dell’adenina colonie rosse YAC con gene SUP 4 = gene per il tRNA con UAA Tyr* SUP 4 integro sopprime la mutazione non senso “ochre” nel gene ADE2 del ceppo di lievito: viene sintetizzata adenina, non c’è accumulo di premetabolita rosso colonie bianche S. cerevisiae (terreno minimo) + YAC senza inserto (SUP attivo) colonie bianche S. cerevisiae (terreno minimo) + YAC con inserto (SUP inattivo) colonie rosse
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VANTAGGI E SVANTAGGI DEL CLONAGGIO IN YAC:
- Chimerismo (co-saldatura di più regioni nello stesso YAC) - Instabilità (soprattutto a livello di regioni ripetute) - Co-trasformazione (più di uno YAC per cellula di lievito) Distribuzione dei cloni in griglie Produzione di filtri con i singoli cloni da utilizzare in screening Allineamento dei cloni in contigui
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ALLINEAMENTO DI YAC PER CONTENUTO DI STS
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