Ibridazione degli acidi nucleici e

Presentazione sul tema: "Ibridazione degli acidi nucleici e"— Transcript della presentazione:

1 Ibridazione degli acidi nucleici e
misurazione dell’espressione di un gene Condizioni che possono destabilizzare la doppia elica provocando la separazione delle due catene (denaturazione) Alte temperature pH alcalino estremo (>13) Bassa forza ionica [Na+] Presenza in soluzione di sostanze che rompono i ponti a idrogeno (urea, formamide).

2 La denaturazione della doppia elica si accompagna a grosse variazioni delle proprietà fisiche delle soluzioni di DNA Diminuzione della viscosità Aumento di assorbanza a 260nm Variazione dell’attività ottica

3 Curve di denaturazione

4 La denaturazione non è un processo irreversibile.
Infatti se dopo la separazione delle eliche si fa scendere gradualmente la temperatura, le singole eliche complementari si possono riappaiarea doppia elica può riformarsi. Questo processo si chiama ibridazione.

5 La discesa graduale della temperatura e la permanenza delle molecole per un certo tempo pochi gradi al di sotto della temperatura di denaturazione sono fondamentali affinchè ci possa essere ibridazione, processo dipendente dai moti di agitazione termica. Se dopo la denaturazione la soluzione viene portata a bassa temperatura non si ha ibridazione, ma stabilizzazione della struttura secondaria delle singole catene.

6 Per mezzo dell’ibridazione si possono formare delle doppie eliche di DNA-DNA, DNA-RNA o RNA-RNA. La condizione fondamentale perché ciò avvenga è che in soluzione si mettano molecole con sequenza complementare (antiparallele). L’ibridazione è una forma di riconoscimento molecolare estremamente specifica.

7 In condizioni opportune di temperatura e forza ionica (stringenza) si possono ottenere anche delle eliche in cui sono tollerati degli appaiamenti non perfetti

8 Effetti della stringenza di ibridazione

9 Cinetiche di rinaturazione

10 Sintesi chimica oligonucleotidi:
Con questo sistema si possono sintetizzare in vitro singoli filamenti di DNA di grandezza compresa tra 6 e 100 nucleotidi

11 Metodi di marcatura degli acidi nucleici

12 Le DNA polimerasi batteriche possono essere purificate e utilizzate per sintetizzare DNA in vitro
dATP dCTP dGTP dTTP Primer sintetico 3’ ’ DNA polimerasi DNA stampo (singolo filamento) 5’ 3’

13 Le DNA polimerasi batteriche possono essere purificate e utilizzate per sintetizzare DNA in vitro
5’ 5’ 3’ DNA stampo (singolo filamento)

14 Le DNA polimerasi batteriche possono essere purificate e utilizzate per sintetizzare DNA in vitro
5’ 3’ 5’ 3’

15 Traccianti utilizzati
Nucleotidi marcati con isotopi radioattivi

16 Traccianti utilizzati
Nucleotidi marcati con sostanze non radioattive

17 Traccianti utilizzati
Nucleotidi marcati con sostanze non radioattive Fluorocromi (marcatura diretta) Enzimi (perossidasi, fosfatasi alcalina) Digossigenina (riconosciuta da anticorpi specifici marcati con fluorocromi o enzimi) Biotina (riconosciuta da avidina marcata con fluorocromi o enzimi)

18 Traccianti utilizzati
Fluorocromi

19 Marcatura di DNA mediante random priming

20 Esempio di ibridazione: FISH (fluorescent in situ hybridization)

21 Come si fa a vedere se un gene è espresso?

22 Purificazione dell’mRNA
(non obbligatoria) L’mRNA rappresenta il 2-4 % dell’RNA totale presente nelle cellule. L’mRNA può essere purificato mediante cromatografia di affinità con oligo-dT legata a diversi supporti solidi. L’mRNA purificato prende anche il nome di poly-A+, e rappresenta la base per diverse procedure di analisi di espressione, oltre che per la sintesi del cDNA necessario alla produzione di genoteche.

23 - + Northern Blotting RNA PolyA+ RNA totale 28S 18S 7S
L’RNA (totale o poly-A+) viene frazionato mediante corsa elettroforetica su gel di agarosio deneturante (il gel contiene formaldeide, e preima della corsa i campioni vengono denaturati in formamide). Questo è necessario per far sì che le molecole di RNA si separino in base al loro peso molecolare, e non in base alla forma. Dopo la corsa si procede come per il Southern blot. 28S 18S + 7S

24 Cella elettroforetica per gel di agarosio

25 Northern Blotting

26 Northern Blotting: e dopo il trasferimento?
Saturazione dei siti a cui la sonda potrebbe legarsi in modo non-specifico (macromolecole di vario genere, in particolare si usano proteine e DNA a singolo filamento non marcato) Ibridazione con sonda marcata Lavaggi per eliminare la sonda legata debolmente al filtro e non ibridata in modo corretto Visualizzazione del segnale (ad es. se la marcatura è radioattiva si fa una autoradiografia)

27 Caratteristiche del Northern Blotting
Tecnica non particolarmente sensibile. La sensibilità può essere aumentata notevolmente se invece dell’RNA totale si usa l’RNA poly-A+. Infatti il quantitativo di RNA che si può caricare su un gel di agarosio è 50 mg. Se invece di caricare RNA totale carico un uguale quantitativo di poly-A+, posso avere un segnale fino a 50 volte maggiore. L’uso di mRNA purificato elimina anche la possibilità di ibridazione non-specifica con l’rRNA. Può essere applicata alla misurazione dell’espressione di un singolo gene Oltre a misurare i livelli di espressione permette di valutare il peso molecolare dei trascritti, e consente di caratterizzare eventuali isoforme alternative . Questa tecnica richiede che l’RNA sia il più integro possibile. Anche solo una rottura per molecola di mRNA determina una forte riduzione del segnale specifico.

28 Esempio di Northern Blotting su RNA da tessuti
AAAAAAA A B C E F D mRNA Sonda1 Sonda 2 B L K H M Sonda1 B L K H M Sonda2

29 Ibridazione in situ Questa metodica si basa sull’ibridazione di sonde marcate direttamente su cellule o tessuti. Si può ibridare su sezioni istologiche o su materiale non sezionato (in quest’ultimo caso si parla whole-mount). E’ l’unica tecnica che permette di localizzare l’espressione di un dato mRNA a livello delle singole cellule. Ideale per studiare i geni espressi in un gruppo ristretto di cellule all’interno di un tessuto, o i geni la cui espressione è modulata nel tempo e nello spazio (estremamente utilizzata negli studi di biologia dello sviluppo).

30 Ibridazione in situ Esempi

31 Ibridazione in situ ‘whole mount’
Esempi

32 Misurazione espressione a livello della proteina
Western Blotting SDS-PAGE

33 Misurazione espressione a livello della proteina
Western Blotting Electroblotting

34 Misurazione espressione a livello della proteina
Western Blotting Immunodetection

35 Misurazione espressione a livello della proteina
Immunofluorescenza ed immunoistochimica Permettono di valutare in quali cellule e in quali strutture subcellulari sono localizzate le proteine

36 Saggi di ibridazione inversa
Sia i macroarrays che i microarrays sono stati sviluppati per soddisfare l’esigenza di misurare contemporaneamente l’espressione di più geni. Entambe le tecnologie si basano sullo stesso principio: 2. L’array viene ibridizzato con una miscela complessa di molecole marcate rappresentative dell’mRNA espresso dalle cellule in esame 1. Come sonda si usano olgonucleotidi o molecole di cDNA non marcati, immmobilizzati in posizioni precise di un supporto solido A B C D mRNA 1 a b g d 2 RT Nucleotidi marcati e z h q 3 i k l m cDNA 4 n x o p Array

37 Macrorray Le molecole sonda vengono legate a membrane di nylon
Come tracciante viene utilizzata la radioattività Analisi di qualche decina o poche centinaia di geni

38 Microrray di cDNA (o di oligonucleotidi lunghi)
Le molecole sonda sono cDNA o oligonucleotidi lunghi paia di basi, sintetizzati tradizionalmente e egati ad un vetrino da microscopio per mezzo di un processo di stampa a getto. Su ogni vetrino trovano posto fino a geni. Metodica che si usa per comparare le differenze di espressione genica tra due campioni.

39

40 cDNA Microarray

41 mRNA mRNA Reverse Reverse Labeled Labeled transcription transcription
1 1 st st strand strand cDNA cDNA Sample 1 (test) Sample 2 (reference) Hybridization on the Hybridization on the cDNA microarray cDNA microarray

42 Generazione di una enorme quantità di dati.
L’acquisizione dei dati è solo la parte iniziale della procedura. La parte più complicata è l’elaborazione della enorme quantità di dati generati da questi esperimenti, necessaria per rispondere ai quesiti biologici di partenza. I dati più significativi devono essere poi verificati con altri sistemi (northern, real time RT-PCR)

43 Applicazioni Definizione delle basi molecolari e identificazione di nuovi markers prognostici per neoplasie e altre patologie

44 Farmacogenomica e tossicogenomica
Applicazioni Farmacogenomica e tossicogenomica

45 Misurazione espressione a livello della proteina
2D-Gel electrophoresis