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PubblicatoAngelina Bellini Modificato 9 anni fa
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COS’E’ IL PROTEOMA? “PROTEins expressed in a functional genOMA”
relazione con lo spazio relazione con il tempo
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STRUMENTI PER LO STUDIO DEL PROTEOMA
Elettroforesi bidimensionale (2-DE) Analisi di immagine (scanner) Spettrometria di massa ( MALDI- TOF; ESI) Ricerca in database on line Microsequenziamento
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2-DE (Elettroforesi bidimensionale)
Una tecnica “vecchia” di 30 anni (1970) Perche solo ora? Combinazione di SDS-PAGE e IEF
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2-DE (Elettroforesi bidimensionale)
“Prima dimensione”: IEF Separazione per pI (punto isoelettrico) “Seconda dimensione”: SDS-PAGE separazione per massa molecolare Prima
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IEF (isoelettrofocalizzazione)
Separazione su gradiente di pH delle proteine Migrazione che si arresta al pI Dalle “anfoline” alle “immobiline” le “strips”
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IEF ( strips e gradiente)
facilmente manipolabili Gradiente dalle anfoline alle immobiline
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SDS - PAGE Elettroforesi denaturante su gel di p-acrilammide
sodio dodecil solfato (SDS) Separazione secondo la massa tutte le proteine sono cariche negativamente
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MAPPA PROTEICA pH 4-9 STRIP -1D SDS-PAGE - 2D
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MAPPA PROTEICA Xilema di eucalipto
STRIP -1D SDS-PAGE - 2D
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Colorazioni Metodi freddi Metodi caldi silver staining
comassie blue (colloidale) ponceau red Fluorescenza (2,4- difenilossazolo) Ab e chemioluminescenza Metodi caldi 35S, 14C, 3H, 32P
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Trasferimento su membrana
Western blot (elettroblotting) supporto maneggevole conservazione isolamento di spots proteici
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Acquisizione e analisi dell’immagine
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Il “decollo” del PROTEOMA
Spettrometria MALDI- TOF Spettrometria ESI Microsequenziamento
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Digestione in gel Lo spot proteico viene decolorato
frammentato in peptidi cristallizzato su una matrice solida
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Spettrometria di massa
In un tubo sotto vuoto applicando una ddp. si formano elettroni e radiazioni positive (J.J. Thompson, inizio 900) Spettrometro di massa: Separa ioni in fase gassosa per rapporto carica/massa strumento analitico che misura la massa molecolare di uno ione (PEPTIDE)
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Spettrometria di massa
Separazione di ioni in fase gassosa secondo il rapporto carica/massa Fasi dell’analisi introduzione del campione ionizzazione (MALDI o ESI) separazione (TOF o ION-TRAP) rivelazione elaborazione
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Sorgente: MALDI Sorgente: La proteina cristallizzata è:
Matrix-Assisted Laser Desorption/Ionization La proteina cristallizzata è: colpita dal LASER evapora ionizza per protonazione spettri semolici (monocarica)
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Analizzatore TOF Tubo di lunghezza definita
sotto vuoto assenza di campo elettrico I peptidi vengono accelerati e “spiccano” il volo Ec=mv2/2 molecole piccole…balzi grandi molecole grosse…balzi piccoli 5 attomoli /ul masse da 500 Da a 150 KD
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Sorgente: ESI Ionizzazione per elettronebulizzazione
particelle liquide cariche da cui gli ioni vengono emessi per desolvatazione ioni multicarica spettri complessi
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Analizzatore ION-TRAP
Analizzatore a quadrupolo (“filtro ionico”) Ion trap: quadrupolo tridimensionale elevata sensibilità elevata risoluzione selezione di uni ione (MS/MS) Frammentazione di un peptide
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Banche dati Dallo spettrometro si ottengono NUMERI!!
Rapporti carica/massa Questi valori (spettri) vengono inseriti in database: EMBL (Europe) GenBank (USA) SWISS PROT
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Banche dati : Tipi di identificazione
Peptide mass fingerprinting masse ottenute vs masse virtuali di peptidi ottenuti “in silico” dele proteine presenti nel database Peptide fragment ion search massa ottenuta tramite MS/MS vs tutte le masse virtuali generabili dal database proteico Peptide sequence tag sequenza desunto da MS/MS vs i frammenti generati “in silico” dal database
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Banche dati : Tipi di identificazione
FASTA BLAST
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Microsequenziamento Chimica di EDMAN
Non rientra propriamente nel Progetto Proteoma Di grande aiuto per la correlazione con sequenze geniche
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CONCLUSIONI SEPARAZIONE SISTEMATICA di PROTEINE IDENTIFICAZIONE
QUANTIFICAZIONE Diff. CELLULARE, MARCATORI per MALATTIE, NEW DRUGS SOSTANZIALE EQUIVALENZA
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