Schema di uno spettrometro di massa Computer Segnale Sistema di introduzione Sorgente di ioni Analizzatore di massa Rivelatore Campione Ioni Ioni 10-5-10-8 torr Campione Sistema di vuoto

Schema di uno spettrometro di massa Computer Segnale Sistema di introduzione Sorgente di ioni Analizzatore di massa Rivelatore Campione Ioni Ioni 10-5-10-8 torr Campione Sistema di vuoto

Sorgenti ioniche Stato del campione Sorgente Gassoso Ionizzazione elettronica (EI) Ionizzazione chimica (CI) Liquido Elettrospray – nanospray APCI (atmospheric pressure chemical ionization) APPI (atmospheric pressure photoionization) Liquido/solido Sorgenti a deplezione/ionizzazione (FAB, MALDI, SIMS)

Interfacciamento GC/MS Stato del campione Sorgente Gassoso Ionizzazione elettronica (EI) Ionizzazione chimica (CI) Queste sorgenti sono adatte all’interfacciamento con la gascromatografia, purché il flusso di fase mobile sia compatibile con la MS GC con colonne impaccate: ~ 20 cm3 min-1 GC con colonne capillari: ~ 1 cm3 min-1 (accettabile per la MS)

Classificazione delle sorgenti ioniche Sorgenti “dure” (elevata frammentazione) Ionizzazione elettronica Sorgenti “molli” (bassa frammentazione) Ionizzazione chimica Desorbimento (MALDI, elettrospray) Fotoionizzazione

Stato del campione Sorgente Liquido Elettrospray – nanospray Sorgenti ioniche Stato del campione Sorgente Liquido Elettrospray – nanospray APCI (atmospheric pressure chemical ionization) APPI (atmospheric pressure photoionization) LC: flussi ~ 0.1 – 1 cm3 min-1. Se l’eluente è acqua, 0.1 cm3 min-1 = 5.6 mmol min-1 = 135 cm3 min-1 (c.n.) Nano-HPLC: flussi ~ 10-4 cm3 min-1  0.1 cm3 min (c.n.)

Sistemi di introduzione del campione Introduzione di campioni solidi o liquidi Sistemi a carica (off line) Il campione viene volatilizzato termicamente ed inviato nella zona di ionizzazione. Sistemi a sonda Per solidi, liquidi non volatili e per campioni in piccole quantità Sistemi per iniezione diretta (o per FIA) Per inviare campioni liquidi ad interfacce a flusso (es. elettrospray) Sistemi separativi in fase liquida (LC, CE, FFF) Interfaccia online con interfacce a flusso

Sorgenti ioniche a desorbimento Elettrospray – nanospray Bombardamento con atomi veloci (FAB) Desorbimento/ionizzazione per impatto ionico Desorbimento-ionizzazione laser assistiti da matrice (MALDI)

Meccanismo fisico dell’elettrospray L’applicazione di un potenziale elettrico ad alto voltaggio ad una goccia di liquido ne provoca la frammentazione in goccioline fini. La causa e’ la repulsione elettrostatica tra le cariche che si generano nella goccia.

Sistema di nebulizzazione elettrospray Cono di Taylor Punta dell’ago

Sistema di desolvatazione per elettrospray Gas di trasporto Gocce di circa 1 µm Gas di desolvatazione Liquido di trasporto Campione Cono di Taylor Capillare riscaldato + - 2-6 kV

Meccanismo di deplezione degli ioni Soluzione del campione 4000 V Pressione atmosferica Calore o gas secco Il calore e/o il gas secco causano la riduzione delle dimensioni delle gocce Vapori del solvente Spettrometro di massa Livelli successivi di vuoto (2 torr – 0.1 torr – 0.01 torr) Esplosione Coulombiana Limite di Rayleigh: Limite di dimensioni della al quale si prevede la frammentazione della goccia. q2 = 8π2ε0γd3 q = carica totale della goccia ε0 = permittività elettrica del mezzo γ = tensione superficiale della goccia d = diametro della goccia

Ionizzazione elettrospray Processo di “evaporazione degli ioni” Nebulizzazione del campione (Cono di Taylor) Evaporazione del solvente (desolvatazione) Deplezione degli ioni (esplosione coulombiana) Modelli di deplezione: desorbimento o evaporazione del solvente

Nanospray con geometria “a Z” Accoppiamento nanoHPLC-MS

L’elettrospray genera spettri multicarica m/z La carica degli ioni è dovuta agli ioni metallici (es Na+) o ai protoni associati alla molecola. Gli addotti carichi sono quindi della forma: (M + H)+, (M + 2H)2+, …, (M + nH)n+

Calcolo della massa da uno spettro multicarica Siano A1 e A2 i valori di m/z per due picchi dello spettro multicarica. Se supponiamo che gli addotti siano formati da H+ (Mr = 1,0079) si ha: Se z1 = z2 + 1 (picchi consecutivi) Risolvendo il sistema si ha:

Ionizzazione chimica a pressione atmosferica (APCI) LC-APCI/MS

Ionizzazione chimica a pressione atmosferica Sorgente ionica analoga alla CI, in cui la ionizzazione avviene per reazioni ione-molecola a pressione atmosferica Gli ioni primari vengono generati a pressione atmosferica mediante scariche a corona nel solvente nebulizzato o mediante emissione β-. Si applica a molecole ioniche o polari, di massa molare fino a circa 1500. Può funzionare sia in modalità positiva che negativa genera prevalentemente ioni monocarica.

ESI vs APCI - Sensibilità Sensibilità relativa Flusso (µL/min) La ESI è sensibile alla concentrazione dell’analita, la APCI alla sua quantità. Per questo la ESI si presta ad essere accoppiata alla micro e nano HPLC.

Sorgente ionica a fotoionizzazione                                              

Sorgente ionica a fotoionizzazione Sorgente ionica a pressione atmosferica (APPI) di recente introduzione Una lampada UV a Kr emette fotoni di energia ~ 10 eV. L’energia dei fotoni è tale da ionizzare selettivamente un’ampia classe di molecole organiche, senza ionizzare il solvente. È adatta a molecole piccole e poco polari, che sono difficilmente ionizzabili con altri metodi. È una sorgente estremamente soft, e rappresenta un’alternativa alla APCI e alla ESI per la ionizzazione a pressione atmosferica.

Applicabilità delle sorgenti a pressione atmosferica

Sorgenti ioniche a desorbimento Desorbimento/ionizzazione laser assistiti da matrice (Matrix-Assisted Laser Desorption/Ionization, MALDI) L’analita viene codepositato su un bersaglio con una matrice, scelta per favorire la vaporizzazione dell’analita. Caratteristiche della matrice: Elevata assorbività alla lunghezza d’onda del laser. Massa molare abbastanza bassa da sublimare facilmente. Bassa reattività chimica. Stabilità al vuoto. Le matrici più utilizzate sono acidi aromatici

Matrici per ionizzazione MALDI Matrice Applicazioni Acido α-ciano-4-idrossicinnamico Acido 3,5-dimetossi-4-idrossicinnammico (sinapinico) Acido 2,5-diidrossibenzoico (gentisico) Acido 3-idrossipicolinico Triidrossiacetofenone Acido 5-clorosalicilico Peptidi, proteine, composti organici Biopolimeri ad elevata massa molare Peptidi, proteine, carboidrati Oligonucleotidi Oligonucleotidi, peptidi Polimeri non idrosolubili Acido α-ciano-4-idrossicinnamico

Portacampione per MALDI

Il processo MALDI Il bersaglio viene colpito da un impulso laser che viene assorbito dalla matrice e provoca la formazione di un plasma contenente gli atomi dell’analita ed atomi e ioni della matrice.

Preparazione del campione per MALDI Il metodo più comune per la preparazione di un campione per MALDI è la dried-droplet. Una certa quantità di soluzione satura della matrice (5-10 µL) viene miscelata ad un volume minore di campione (1-2 µL) Una goccia (0.5 – 2 µL) della miscela ottenuta si deposita sulla piastrina portacampione del MALDI e si fa asciugare a T ambiente, in modo che cristallizzi completamente prima di essere introdotta nello spettrometro di massa.

Sorgenti laser per MALDI Laser a N2 (337 nm), Nd-YAG (266 e 355 nm) o IR (Er-YAG, 2.94 µm). Energia del laser: 106 – 1010 W cm-2 Diametro dello spot laser: < 1 µm Durata dell’impulso: ~10 - 100 ns Misure ottenute sulla media di 50 – 100 colpi.

L’eventuale frammentazione può avvenire secondo tre meccanismi: Il processo MALDI La ionizzazione avviene per trasferimento di carica dagli ioni della matrice alle molecole del solvente, secondo un processo non del tutto noto che porta alla prevalente formazione di ioni monocarica non frammentati. L’eventuale frammentazione può avvenire secondo tre meccanismi: frammentazione immediata: avviene durante il processo di desorbimento/ionizzazione frammentazione veloce: avviene dopo la ionizzazione ma prima dell’accelerazione degli ioni verso l’analizzatore di massa frammentazione per decadimento port-sorgente (PSD): avviene dopo l’accelerazione degli ioni (ad esempio nel tubo di volo). In questo caso i frammenti non possono essere risolti dallo ione molecolare.

MALDI-TOF MS Range di massa fino a 106  Analizzatore a tempo di volo.

Spettro di massa del batterio intero Escherichia coli Lo spettro di massa Spettro di massa di ioni monocarica (MALDI/TOFMS) Intensità relativa m/z Spettro di massa del batterio intero Escherichia coli

MALDI: vantaggi e limitazioni Poco sensibile alle contaminazioni (sali, tamponi, detergenti ecc.) Solitamente non richiede complessi passaggi di purificazione del campione. Può analizzare velocemente miscele complesse di analiti (lo spettro è facile da interpretare) Non è una sorgente a flusso La ionizzazione è un processo competitivo, per cui la simultanea presenza di più analiti può dare luogo ad interferenze. L’analisi quantitativa è limitata dalla ridotta omogeneità del campione.

Schema di uno spettrometro di massa Computer Segnale Sistema di introduzione Sorgente di ioni Analizzatore di massa Rivelatore Campione (gassoso) Ioni Ioni 10-5-10-8 torr Campione Sistema di vuoto

Deve garantire una buona trasmissione e focalizzazione degli ioni. Analizzatore di massa Fa sì che al rivelatore arrivino ioni in un ristretto intervallo di massa. Determina in gran parte il potere risolvente dello spettrometro di massa. Deve garantire una buona trasmissione e focalizzazione degli ioni.

Risoluzione La capacità di uno spettrometro di massa di differenziare le masse è generalmente espressa dalla risoluzione R definita come: R = m/Δm dove Δm è la differenza di massa tra due picchi adiacenti risolti e m è la massa nominale del primo picco (o la media delle masse dei due picchi). Due picchi sono considerati separati se l’altezza della valle tra di essi è inferiore ad una certa percentuale della loro altezza (di solito il 10%). Uno spettrometro con una risoluzione di 4 000 risolverà due picchi con valori di m/z 400,0 e 400,1 (o di 40,00 e 40,01). Gli spettrometri commerciali hanno R che variano circa tra 500 e 500 000.

Definizione alternativa Risoluzione Picchi risolti al 10% della valle Picchi risolti al 80% della valle Intensità Definizione alternativa La risoluzione di un picco isolato si può anche definire come larghezza δm del picco al x% dell’altezza. Spesso si prende x = 50%, e δm è la larghezza a metà altezza.

Classi di analizzatori di massa A settore magnetico A doppia focalizzazione A quadrupolo lineare (Q) Trappola ionica a quadrupolo (QIT) A tempo di volo (TOF) A risonanza ciclotronica e trasformata di Fourier (FT-ICR)

Analizzatore di massa a quadrupolo Potenziale nel quadrupolo

Quadrupolo ideale ad elettrodi iperbolici

Campo “a sella” del quadrupolo Al centro del quadrupolo lo ione si trova in un potenziale elettrico a sella, che ruota alla frequenza del campo a RF. L’energia dello ione viene continuamente convertita da cinetica a potenziale e viceversa. Lo ione assume quindi un moto oscillatorio attorno alla posizione di equilibrio (sull’asse del quadrupolo), con una frequenza ed un ampiezza di oscillazione che dipendono dalla frequenza e ampiezza del campo, dalla massa e dalla carica dello ione.

Traiettorie dello ione piano xz Traiettoria instabile lungo x, stabile lungo y piano yz piano xz piano yz Traiettoria stabile sia lungo x che lungo y

Equazioni del moto dello ione Seconda legge di Newton Introducendo l’espressione del campo Φ

Equazione di Mathieu Dalle equazioni del moto mediante un cambio di variabili (t, U, V)  (ξ, a, q) si ha:

Diagramma di stabilità del quadrupolo stabile lungo x stabile lungo y Aree di stabilità per uno ione lungo gli assi x e y. A-D: aree di stabilità sul piano x-y. In MS si sfrutta normalmente la zona A. La zona ombreggiata si riferisce a potenziale U positivo.

Filtro di massa a quadrupolo a (funzione del potenziale a DC, U) q (funzione dell’ampiezza del potenziale a RF, V) linea di scansione di massa La linea di scansione di massa è il luogo geometrico dei punti (a, q) per gli ioni a U, V, ω e r0 fissati. Siccome a/q non dipende da m/z, tutti i punti stanno su una retta di pendenza 2U/V.

Scansione di m/z in un quadrupolo linea di scansione di massa Variando U e V, senza variare il rapporto U/V, si realizza la scansione di massa.

Analizzatore di massa a quadrupolo Massimo valore m/z ~ 4 000 Risoluzione ~ 3 000 I quadrupoli sono strumenti a bassa risoluzione Si lavora normalmente alla risoluzione di una unità di massa. Leggero, di dimensioni contenute Facile da accoppiare alla cromatografia Efficiente trasmissione degli ioni Necessaria una elevata precisione nell’allineamento delle barre degli elettrodi

Classi di analizzatori di massa A settore magnetico A doppia focalizzazione A quadrupolo lineare (Q) Trappola ionica a quadrupolo (QIT) A tempo di volo (TOF) A risonanza ciclotronica e trasformata di Fourier (FT-ICR)

Trappola ionica a quadrupolo Processore di scansione Generatore di RF Rivelatore Generatore supplementare di RF Elettrodo a calotta (end-cap) Elettrodo ad anello Filamento

Trappola ionica a quadrupolo

Traiettorie ioniche nella trappola a quadrupolo Moto degli ioni in direzione z Moto degli ioni in direzione r tempo Gli ioni vengono intrappolati forzandoli su traiettorie chiuse stabili all’interno della trappola. Quando la traiettoria di uno ione diventa instabile, questo esce dalla trappola e viene rivelato.

Zone di stabilità per la trappola ionica stabile su z stabile su z stabile su r

Selezione di m/z nella prima regione di stabilità linea di scansione di massa Scansione di massa

Espulsione di uno ione instabile Se U=0, la trappola trattiene tutti gli ioni al di sopra di una certa massa. Aumentando l’ampiezza del potenziale a RF (V), gli ioni più leggeri, che si trovano a destra sulla linea di scansione di massa, diventano instabili e vengono espulsi dalla trappola.

Espulsione di ioni per risonanza di RF Applicando un secondo campo di AC a RF, è possibile fornire energia di risonanza agli ioni in base al loro valore di m/z. In questo modo si possono espellere tutti gli ioni che hanno un determinato valore di m/z, oppure tutti quelli che hanno m/z al di fuori di un certo intervallo. Frequenze di espulsione

Trappola ionica lineare Elettrodi terminali (a DC) Quadrupolo lineare (solo RF)

Classi di analizzatori di massa A settore magnetico A doppia focalizzazione A quadrupolo lineare (Q) Trappola ionica a quadrupolo (QIT) A tempo di volo (TOF) A risonanza ciclotronica e trasformata di Fourier (FT-ICR)

Analizzatore a tempo di volo (TOF) Zona di accelerazione con campo elettrostatico E Ioni positivi Sorgente d V = 0 dE = V0 = 20 000 V V = V0 L

Calcolo di m/z dal tempo di volo Energia cinetica Velocità Tempo di volo Al tempo di volo nella zona di volo va aggiunto il tempo di accelerazione nella zona in cui viene applicato di potenziale E = V0/d

Risoluzione in TOFMS Siccome Δt è costante (dipende dalla dispersione dei tempi di ionizzazione e delle energie degli ioni generati), si può aumentare la risoluzione aumentando t, ossia: aumentando la lunghezza del tubo di volo diminuendo la velocità degli ioni, cioè l’energia di ionizzazione

Reflectron TOF a stadio singolo Metodo per correggere la distribuzione di velocità, diminuendo Δt Sorgente Reflectron TOF a stadio singolo

Reflectron TOF a doppio stadio Rivelatore Sorgente

Reflectron a campo quadratico Potenziale iperbolico a simmetria assiale:   r, z sono coordinate cilindriche. k, a e C sono costanti. 2) Potenziale iperbolico-logaritmico a simmetria assiale: d > 0 e b > 0 sono costanti. 3) Potenziale iperbolico planare: a, b e d sono costanti.

Analizzatore di massa a tempo di volo Massimo valore m/z > 200 000 Risoluzione fino a 105. Il reflectron consente di: Ridurre le dimensioni Aumentare la risoluzione Ideale accoppiamento con sorgenti pulsate Efficiente trasmissione degli ioni Per la doppia spettrometria di massa può essere accoppiato con altri analizzatori (qTOF)

Classi di analizzatori di massa A settore magnetico A doppia focalizzazione A quadrupolo lineare (Q) Trappola ionica a quadrupolo (QIT) A tempo di volo (TOF) A risonanza ciclotronica e trasformata di Fourier (FT-ICR)

Principi della ICRFT MS Gli ioni in un campo elettromagnetico si muovono su traiettorie circolari (o a spirale), generando esse stesse una radiazione elettromagnetica. Tale r.e.m. può essere rivelata da un’antenna, generando un segnale che contiene le radiofrequenze di tutti gli ioni in funzione del tempo. Mediante trasformata di Fourier il segnale viene passato dal dominio del tempo al dominio delle frequenze, e di conseguenza al dominio delle masse.

Analizzatore a risonanza ciclotronica Piano di ricezione Piano di emissione

Analisi di massa a trasformata di Fourier Segnale nel dominio del tempo Segnale trasformato nel dominio delle frequenze  m/z

ICR FTMS – estrema risoluzione Ione Cl positivo Ione Cl negativo differenza di massa: 2 elettroni Esempio di spettro di massa ICR FT con risoluzione maggiore di 1 000 000, ottenuto con un magnete superconduttore da 4.7 Tesla.

Analizzatore di massa a ICR FT Massimo valore m/z > 50 000 Risoluzione fino a 106. Possibilità di confinare gli ioni per la MS/MS. Massima accuratezza nella determinazione delle masse. Semplicità nel passaggio da ioni positivi a ioni negativi. Prezzi ancora proibitivi per molte applicazioni (500 –1 400 k€)

Doppia spettrometria di massa (MS/MS) Ionizzazione e frammentazione analisi di massa m/z decomposizione m1

Applicazioni della MS/MS Maggior contenuto di informazioni Studio della struttura Informazioni addizionali per determinare la struttura di uno ione Rivelazione selettiva di uno ione Drastica riduzione delle interferenze Studio delle reazioni ione-molecola

MS/MS nello spazio e nel tempo Cella di collisione MS/MS nello spazio MS/MS nel tempo Tempo 1 Tempo 2 Tempo 3 Scansione dello ione prodotto Selezione m/z Scansione

Combinazioni strumentali per MS/MS MS/MS nello spazio Settori elettrico-magnetico: EB/EB o BE/BE (max MS4). Triplo quadrupolo: QqQ Tempo di volo lineare/reflectron: TOF/TOF. Analizzatori ibridi: EBqQ QqTOF MS/MS nel tempo (MSn) Trappola ionica a quadrupolo (max MS8) Risonanza ciclotronica (ICR FTMS) Combinati: Qq(trap) MSn nello spazio e/o nel tempo

Modalità di scansione MS/MS Scansione dello ione prodotto Selezione m/z Scansione Scansione dello ione precursore Simbolismo alternativo Analizzatore di massa fisso Spettrometro di massa a scansione Scansione dello ione prodotto Scansione dello ione precursore Scansione di perdita neutra Monitoraggio di reazione selezionata Scansione Selezione m/z Scansione di perdita neutra Scansione m/z = x Scansione m/z = x-a Monitoraggio di reazione selezionata Selezione del precursore m/z = a Selezione del frammento m/z = b

Modalità di scansione MS/MS Scansione dello ione prodotto: consiste nel selezionare uno ione precursore, di m/z fissato, e nella determinazione di tutti gli ioni prodotti dalla frammentazione attivata per collisione (CID). Se nella cella di collisione si usa un gas reagente, si osservano i prodotti di reazione attivate per collisione (CAR). Quando vengono prodotti solo ioni frammento, questa modalità di scansione è detta anche scansione di ioni frammento. Scansione dello ione precursore: consiste nello scegliere uno ione prodotto e nel determinare gli ioni precursori. Permette di identificare gli ioni precursori di un certo frammento. Questa modalità di scansione, che non si può realizzare con la in time MS/MS, richiede la focalizzazione del secondo analizzatore su di uno ione selezionato, e la scansione di massa sul primo analizzatore. Vengono rivelati gli ioni precursori che per reazione o frammentazione producono ioni figlio della massa selezionata.

Modalità di scansione MS/MS Scansione di perdita neutra (NLS): consiste nello scegliere un frammento neutro e nel rivelare tutte le frammentazioni che portano alla perdita di tale frammento. Come nel caso della scansione dello ione precursore, questa modalità non è realizzabile in MS/MS nel tempo. La scansione richiede che entrambi gli analizzatori scandiscano contemporaneamente, ma con una differenza di massa fissa a fra di loro. Quando uno ione di massa m attraversa il primo analizzatore, viene rivelato solo se produce un frammento di massa m – a. Monitoraggio di reazioni selezionate (SRM): consiste nel selezionare una reazione di frammentazione. In questa modalità, entrambi gli analizzatori sono focalizzati su masse selezionate. Non si ha quindi scansione. È analogo al “monitoraggio di ioni selezionati” in spettrometria di massa singola, ma in questo caso gli ioni selezionati dal primo analizzatore danno un segnale solo se producono un certo frammento mediante una certa reazione. L’assenza di scansione permette di aumentare la sensibilità, oltre che la selettività.

Combinazioni strumentali per MS/MS MS/MS con risoluzione nello spazio Settori elettrico-magnetico: EB/EB o BE/BE (max MS4). Triplo quadrupolo: QqQ Tempo di volo lineare/reflectron: TOF/TOF. Combinati: EBqQ QqTOF MS/MS con risoluzione nel tempo (MSn) Trappola ionica a quadrupolo (max MS8) Risonanza ciclotronica (ICR FTMS) Combinati: Qq(trap) MSn nello spazio e/o nel tempo

MS di molecole biologiche Classi di biomolecole Proteine - Peptidi Acidi nucleici Polisaccaridi Lipidi Tecniche MS Sorgenti: (FAB), MALDI, ESI Analizzatori: TOF, quadrupolo (con ESI), FT ICR, ibridi Tecniche separative HPLC, SEC, CZE, elettroforesi su gel.

I progetti -OMICI Genoma Trascrittoma Proteoma Identificare tutta la serie di ordini che il codice genetico può impartire ad una cellula, per comprendere e prevenire situazioni patologiche Trascrittoma Identificare e quantificare tutta la serie di ordini che il genoma impartisce effettivamente alla cellula, per comprendere ed eventualmente correggere le modalità di regolazione genica Proteoma Caratterizzare e quantificare il contenuto proteico di un sistema cellulare, mediante la determinazione di profili di espressione differenziati nel tempo e nello spazio, comprensivi delle informazioni sulle interazioni molecolari

Scelta della tecnica MS

Massa monoisotopica e massa chimica Massa monoisotopica (picco 12C): 1085.55 Massa media (picco 12C): 1086.28 Per peptidi e proteine la differenza fra massa media (chimica) e massa mono-isotopica è circa 0.06%, distinguibile se lo spettrometro ha risoluzione pari a: R = 100/0.06 = 1667 (nell’esempio sopra, R = 5000)

Identificazione del picco 12C Insulina Albumina bovina Per piccoli peptidi il primo picco, relativo alla massa monoisotopica, è anche quello più intenso. Questo non è vero per proteine di massa maggiore, in cui il picco 12C può essere poco intenso o addirittura non rivelabile. Oltre un centro valore di massa, il dato analitico utile è la massa media, che si ricava dal centroide del picco.

Risoluzione e sensibilità Quando non è possibile raggiungere risoluzione unitaria, ed identificare il picco di massa monoisotopica, è poco conveniente superare la risoluzione alla quale si può determinare la massa media con accuratezza. Questo è vero in particolare quando si deve raggiungere un compromesso fra risoluzione e sensibilità

Ruolo della MS in proteomica Proteomica sistematica Identificazione e sequenziamento di tutte le proteine contenute in una cellula. (MS o MS/MS accoppiata a 2D PAGE o 2D LC per l’analisi strutturale di miscele di peptidi e proteine intere) Proteomica differenziale Studio delle differenze rilevabili fra il proteoma di una cellula sana e quello di una cellula malata (2D PAGE + MS o MS/MS per la determinazione di mutazioni nella sequenza, modifiche post-traduzionali, modifiche conformazionali, sovra o sottoespressione) Proteomica funzionale Studio della funzione biologica delle proteine e delle loro interazioni con proteine e peptidi (Separazione in condizioni non denaturanti + MS di proteine e complessi proteici allo stato nativo)

Strategie proteomiche basate sulla MS Proteina (sconosciuta) 2D SDS PAGE bottom-up Top-down digestione Miscela di peptidi Massa dei peptidi mediante LC/LC/ESIMS shotgun Ricerca dei pesi molecolari in banca dati Massa di proteine intere mediante (LC)ESI/MS sconosciuta nota Sequenziamento in MSn sconosciuta MSn per ulteriori Informazioni sulla sequenza Identificazione e caratterizzazione di proteine nota Ricerca dei pesi molecolari in banca dati

Approccio proteomico top-down Si basa sulla determinazione della massa accurata (media) delle proteine in una matrice di complessità ridotta (ottenuta per purificazione con metodi biochimici o per separazione con tecniche non denaturanti) Permette di determinare la conformazione delle proteine nel loro stato nativo, e le interazioni proteina-proteina (complessi proteici fra biomarker e proteine di trasporto, oligomeri funzionali) Permette di determinare la composizione amminoacidica della proteina, ma non la loro sequenza Non identifica la proteina in modo univoco in un proteoma complesso Permette di studiare isoforme (mutazioni di singoli amminoacidi) e modificazioni post-traduzionali, ma non di localizzarle.

Approccio proteomico top-down Spettro m/z in ESI/qTOF di perossidasi di rafano (HRP) allo stato nativo Il software dello spettrometro di massa identifica le famiglie di picchi negli spettri multicarica sovrapposti, ne determina il valore di m/z medio (il centroide del picco) e calcola lo spettro di massa ricostruito

Approccio proteomico top-down 41521.9 B 41600.4 C 42343.1 D 42422.0 E 43165.0 F 43243.0 2Ca2+ Glicosilazione Sullo spettro di massa ricostruito si possono identificare isoforme, complessi metallo-proteina e modificazioni post-traduzionali

Emoglobina Studio conformazionale in ESI/qTOF MS Eme: Mw 615.35 Da A:17566.7±0.6 Da A7 A10 Eme: Mw 615.35 Da B11 B10 B:16951.5±0.3 Da B9 B8 B7

Analisi RP HPLC ESI/TOF MS di proteine Uricasi M.W. 34153.95±0.81 Da

MALDI/TOF MS di una proteina nativa

Modalità di scansione MS/MS Scansione dello ione prodotto Selezione m/z Scansione Scansione dello ione precursore Simbolismo alternativo Analizzatore di massa fisso Spettrometro di massa a scansione Scansione dello ione prodotto Scansione dello ione precursore Scansione di perdita neutra Monitoraggio di reazione selezionata Scansione Selezione m/z Scansione di perdita neutra Scansione m/z = x Scansione m/z = x-a Monitoraggio di reazione selezionata Selezione del precursore m/z = a Selezione del frammento m/z = b

LC-MS/MS per l’identificazione “de novo” della sequenza peptidica m/z 600 200 1000 y2 b3 y3 y4 y5 b7 y7 b8 y6 b9 y9 y10 b11 b12 MS/MS MS trace MS/MS trace 30 40 50 Time [min]

Masse degli aminoacidi Aminoacido Codice (3 lettere) Codice (1 lettera) Massa monoisotopica Massa chimica Glicina Gly G 57.02147 57.052 Alanina Ala A 71.03712 71.079 Serina Ser S 87.03203 87.078 Prolina Pro P 97.05277 97.117 Valina Val V 99.06842 99.133 Treonina Thr T 101.04768 101.105 Cisteina Cys C 103.00919 103.144 Isoleucina Ile I 113.08407 113.160 Leucina Leu L Asparagina Asn N 114.04293 114.104 Aspartato Asp D 115.02695 115.089 Glutammina Gln Q 128.05858 128.131 Lisina Lys K 128.09497 128.174 Gluatammato Glu E 129.04260 129.116 Metionina Met M 131.04049 131.198 Istidina His H 137.05891 137.142 Fenilalanina Phe F 147.06842 147.177 Arginina Arg R 156.10112 156.188 Tirosina Tyr Y 163.06333 163.170 Triptofano Try W 186.07932 186.213

Frammentazione dei peptidi x3 y3 z3 x2 y2 z2 x1 y1 z1 R1 R2 R3 R4 O O O O H2N-CH C NH CH C NH CH C NH CH-COH a1 b1 c1 a2 b2 c2 a3 b3 c3 R4 R1 R2 + + R3 O O O O C NH CH C NH3 CH C NH CH-COH H2N-CH b2 y”2

Sali immonio degli amminoacidi Masse caratteristiche Prolina (P) 70 Valina (V) 72 Leucina (L) 86 Isoleucina (I) Metionina (M) 104 Istidina (H) 110 Fenilalanina (F) 120 Tirosina (Y) 136 Triptofano (W) 159 R + H2N=CH

Interpretazione dello spettro di massa di peptidi

Modifiche post-traduzionali Glicosilazione Variabile (153.21->3000 Da) Fosforilazione +79.98 Da Acetilazione +42.04 Da Formilazione +28.26 Da Ossidazione +16.01 Da Riduz. ponti disolfurici +2.02 Da Ancora glicolipidica Variabile

Identificazione di siti modificati Peso Molecolare Proteina Intatta Coincide con valore atteso? No Sì Proteina sbagliata Mutazione Modifica post-traduz. Peptide Mapping Peptide/i modificato/i MS/MS Identificazione Sito/i modificato/i

Proteomica bottom-up identificazione della proteina Elettroforesi bidimensionale (2D PAGE) 1000 1500 2000 Mass (m/z) estrazione dei peptidi analisi MALDI/TOFMS taglio degli spot; digestione con tripsina identificazione della proteina

+ H R-C N-R’ O H R-C-OH H N-R’ O Digestione enzimatica proteina legame peptidico H R-C N-R’ *alcuni enzimi proteolitici specifici sono: tripsina tagli specifici solo a Lys-X o Arg-X Lys-C Lys-X Arg-C Arg-X Glu-C (V-8) Glu-X and Asp-X O Enzima * proteolitico H2O H + (frammenti proteolitici) R-C-OH H N-R’ O

Identificazione di peptidi in banca dati È la più comune procedura per l’identificazione dei peptidi mediante spettrometria di massa La lista dei pesi molecolari ottenuta dall’analisi MALDI/TOFMS viene inserita in banca dati per l’identificazione della proteina incognita. Solitamente i segnali dei picchi a basso peso molecolare (< 500 Da) vengono esclusi dalla ricerca in quanto potrebbero essere segnali di matrice.

MALDI TOF/TOF MS/MS Sorgente 1 Laser Rivelatore reflectron Fascio MS/MS Fascio MS Raggio laser Reflectron Rivelatore lineare Sorgente 2 Cella di collisione Lenti di ritardo Selettore ionico

Motore di ricerca per l’identificazione delle proteine ProFound (http://prowl.rockefeller.edu)

Digestione automatizzata: MALDI prep Procedura di identificazione automatizzata Digestione automatizzata: MALDI prep Spot Cutter 2D GEL MALDI/TOF MS Risultati elaborazione dei dati e ricerca in banca dati

Vantaggi e limiti dell’elettroforesi L’elettroforesi bidimensionale è oggi la più potente tecnica separativa utilizzata per le proteine, tuttavia essa presenta una serie di svantaggi: E’ ristretta a proteine in un intervallo di masse molecolari tra 104 e 106 Da Non è possibile rivelare proteine poco espresse (bassa sensibilità) Bassa riproducibilità da gel a gel Lo spettrometro di massa non può essere interfacciato on-line con la tecnica separativa.

Una alternativa alla 2D PAGE Cromatografia bidimensionale Una alternativa alla 2D PAGE In cromatografia multidimensionale due (o più) tecniche con proprietà “ortogonali” vengono combinate per migliorare la separazione Separazioni cromatografiche 1000 1500 2000 Mass (m/z) (*) Analisi di massa Raccolta di frazioni (*)digestione proteolitica

LC/LC MSn per l’analisi di miscele di peptidi frazione 1 frazione 2 minuti prima dimensione: cromatografia a scambio ionico diverse frazioni di peptidi vengono eluite effettuando un gradiente di tampone salino a valori crescenti di forza ionica.

LC/LC MSn per l’analisi di miscele di peptidi Seconda dimensione: cromatografia a fase inversa (C4 – C18) Ciascuna frazione contenente i peptidi eluiti dalla colonna a scambio ionico viene ulteriormente separata su una colonna cromatografica a fase inversa e i singoli peptidi sono rivelati e identificati utilizzando uno spettrometro di massa ESI-Q/TOF in modalità MS/MS

API – QqTOF MS/MS Ottica di trasferimento Cono di campionamento Quadrupolo (ponte ionico) Esapolo (ponte ionico)