ANESTESIA Lo scopo dell’anestesia consiste nel prevenire la percezione degli stimoli dolorosi senza indurre una indebita depressione delle funzioni fisiologiche.

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1 ANESTESIA Lo scopo dell’anestesia consiste nel prevenire la percezione degli stimoli dolorosi senza indurre una indebita depressione delle funzioni fisiologiche

2 ANESTESIA dell’animale
a) Medicazione pre-anestetica dell’animale Somministrazione di farmaci prima dell’anestesia (10’)  induzione + rapida e sicura

3 parasimpaticolitico (antagonista colinergico muscarinico)
ATROPINA (0.04 mg/kg s.c.) parasimpaticolitico (antagonista colinergico muscarinico) secrezioni bronchiali, salivari e nasali azione broncodilatatoria previene bradicardia

4 anestetico dissociativo
KETAMINA anestetico dissociativo associata ad altri agenti (analgesici, miorilassanti)  anestesia bilanciata Ratto: Ketamina 30 mg/kg i.p. + XILAZINA 10 mg/kg i.p. Topo: Ketamina 10 mg/kg i.p. + ACEPROMAZINA 0.75 mg/kg i.p. sistema cardiocircolatorio: FC e PA sistemica stimola secrezioni bronchiali e salivari utilizzata soprattutto come pre-medicamento nell’anestesia inalatoria

5 XILAZINA attività analgesica, sedativa, miorilassante
associata alla Ketamina per ridurre l’ipertono muscolare indotto dalla K. sistema cardiocircolatorio: FC e PA sistemica sistema respiratorio: lieve FR  diuresi  iperglicemia

6 ACEPROMAZINA attività sedativa, ipnotica
motilità spontanea degli animali potenzia l’azione di anestetici, analgesici e ipnotici  dosaggi antiaritmico  ipotensione  ipotermia  glicemia

7 b) Anestesia vera e propria dell’animale
Scelta del tipo di anestetico: * tipologia e durata dell’intervento * condizioni dell’animale su cui si va ad operare

8 Anestesia INIETTIVA Ratto: PENTOBARBITAL (50-60 mg/kg i.p.) deprime SNC in modo dose-dipendente deprime i sistemi respiratorio e cardiocircolatorio  ipotensione EQUITENSINA (3 ml/kg i.p.) associazione anestetica (pentobarbitale Na+, cloralio idrato, MgSO4, glicole propilenico, EtOH) ottimo margine di sicurezza Topo: TRIBROMOETANOLO (Avertin) 2.5% (250 mg/kg i.p.) ipnotico, miorilassante moderata depressione respiratoria e cardiaca

9 Anestesia INALATORIA anestetici - tossici, + facilmente smaltibili dall’organismo risveglio più rapido dell’animale anestesia + controllata equipaggiamento adeguato monitoraggio costante dell’animale anestetici: esplosivi, infiammabili e irritanti esposizione cronica  rischio per l’operatore ISOFLURANO (5%  %) ETERE DIETILICO

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11 FASI E PIANI DELL’ANESTESIA GENERALE
INDUZIONE ECCITAZIONE ANESTESIA CHIRURGICA Piano 1: perdita del riflesso palpebrale Piano 2: assenza di movimenti oculari; respirazione regolare e profonda Piano 3: paralisi dei muscoli intercostali FASE IPOSSICO-TOSSICA

12 CRITERI PER IL MONITORAGGIO DELLA PROFONDITÀ DELL’ANESTESIA
Riflesso di raddrizzamento Riflesso di deglutizione (riflesso laringeo) Riflesso palpebrale Riflesso podale Riflesso pupillare Riflesso corneale

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14 CONTROLLO DELLE FUNZIONI VITALI
ECG e ritmo cardiaco gittata cardiaca pressione arteriosa e venosa e pressione nell’arteria polmonare capnogramma stato dei gas disciolti nel sangue e stato acido-base saturazione arteriosa di ossigeno volume respiratorio e frequenza pressione nelle vie respiratorie temperatura corporea EEG

15 VENTILAZIONE dell’animale
Anestesia  depressione sistema cardio-respiratorio Chirurgia (es. apertura torace)  esposizione degli organi alla P. atmosferica  collasso dei polmoni VENTILAZIONE dell’animale [Intubazione endotracheale dell’animale]  assicura volume sufficiente per una espansione “ideale” dei polmoni evitando il loro collasso  permette gli scambi O2/CO2

16 Estubazione dell’animale e sua osservazione
Trattamenti post-chirurgici a) O2-terapia b) lampada IR c) Profilassi Analgesica: BUPRENORFINA ( mg/kg s.c.) d) Profilassi Antibiotica: AMPICILLINA (150 mg/kg s.c.)

17 ANESTESIA Depressione dei centri respiratori Ventilazione forzata
Ipotermia Mantenimento della temperatura corporea Cautela nella manipolazione dell’animale Digiuno

18 PARENTERAL ANESTHESIA OF MICE
Agent Dose Duration of surgical anesthesia Pentobarbital 50 mg/kg IP 20-40 minutes Tribromoethanol (avertin) 240 mg/kg IP30 15-45 minutes Metomidate/fentanyl 60 mg/kg mg/kg SQ29 20-30 minutes Ketamine/xylazine mg/kg + 10 mg/kg IP29

19 PARENTERAL ANESTHESIA OF RATS
Agent Dose Onset Duration Pentobarbital 30 mg/kg IP 19 5 90 minutes 40 mg/kg IP 19 120 minutes Ketamine-xylazine 40 mg/kg; 5 mg/kg IP19 80 minutes 60 mg/kg; 7.5 mg/kg19 2 115 minutes Ketamine-medetomidine 75 mg/kg; 0.5 mg/kg29 20-30 minutes

20 Criteri per una morte “umana”
EUTANASIA Criteri per una morte “umana” La morte deve sopraggiungere senza segni di panico, dolore o stress minimo intervallo di tempo di coscienza affidabilità e riproducibilità sicurezza per il personale implicato nella procedura minimi effetti fisici e/o psicologici indesiderati sull’animale compatibilità con i requisiti e gli scopi dello studio scientifico scarsi o nulli effetti emotivi sull’osservatore e sull’operatore minimo impatto ambientale ed ecologico strumentazione meccanica semplice e di facile manutenzione locale adibito alla procedura separato dai locali in cui soggiornano gli animali

21 Meccanismi con cui viene indotta la morte
EUTANASIA Meccanismi con cui viene indotta la morte IPOSSIA DEPRESSIONE DIRETTA DELL’ATTIVITÀ NEURONALE COMPROMISSIONE DELL’ATTIVITÀ NEURONALE MEDIANTE METODI FISICI

22 EUTANASIA Metodi fisici
concussione dislocazione cervicale decapitazione shock elettrico microonde dissanguamento

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25 Agenti farmacologici non inalatori
EUTANASIA Agenti farmacologici non inalatori barbiturici T-61 (TANAX) cloralio idrato chetamina cloridrato magnesio solfato

26 EUTANASIA Anestetici inalatori
etere alotano metossiflurano isoflurano enflurano protossido di azoto

27 EUTANASIA Gas non anestetici
monossido di carbonio azoto argon anidride carbonica cianuro di potassio

28 EUTANASIA Method of euthanasia Rabbits/Rodents <125gm
Rabbits/Rodents >125 gm and < 1 kg Carbon dioxide Method of choice Barbiturate overdose (iv) Barbiturate overdose (ip) Anesthetic overdose Exsanguination in anesthetized animal Other acceptable method KCL (iv) in anesthetized animal Not recommended due to technical difficulty Decapitation in sedated or anesthetized animal Cervical dislocation in anesthetized or sedated animal Decapitation in awake animal Acceptable only with scientific justification Cervical dislocation in awake animal Stunning in an awake animal Unacceptable method of euthanasia

29 EUTANASIA Method of euthanasia Rabbits/Rodents > 1 kg but < 5 kg
Dogs and Cats Carbon dioxide Other acceptable method Unacceptable method of euthanasia Barbiturate overdose (iv) Method of choice Barbiturate overdose (ip) Anesthetic overdose Exsanguination in anesthetized animal KCL (iv) in anesthetized animal Decapitation in sedated or anesthetized animal Acceptable only with scientific justification Cervical dislocation in anesthetized or sedated animal Decapitation in awake animal Cervical dislocation in awake animal Stunning in an awake animal

30 EUTANASIA Method of euthanasia Non-Human Primates Carbon dioxide
Unacceptable method of euthanasia Barbiturate overdose (iv) Method of choice Barbiturate overdose (ip) Anesthetic overdose Exsanguination in anesthetized animal Other acceptable method KCL (iv) in anesthetized animal Decapitation in sedated or anesthetized animal Cervical dislocation in anesthetized or sedated animal Decapitation in awake animal Cervical dislocation in awake animal Stunning in an awake animal

31 EUTANASIA Species IV route (mg/kg) IP route (mg/kg) Mouse 150 Rat
Barbiturate euthanizing doses (mg/kg): Species IV route (mg/kg) IP route (mg/kg) Mouse 150 Rat Rabbit 100 Guinea Pig 120 Hamster Sheep 90 Goat Chicken Cat 80 Dog Swine Ferret 12035 Primate 80